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- ゆめじ さかわ
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1 Introduction to key concepts in Illumina sequencing data analysis イルミナシーケンスデータ解析入門その前に 癸生川絵里 (Eri Kibukawa) Bioinformatics Support Scientist 2012 Illumina, Inc. All rights reserved. Illumina, illuminadx, BaseSpace, BeadArray, BeadXpress, cbot, CSPro, DASL, DesignStudio, Eco, GAIIx, 遺伝子 tic Energy, ゲノム Analyzer, ゲノム Studio, GoldenGate, HiScan, HiSeq, Infinium, iselect, MiSeq, Nextera, Sentrix, SeqMonitor, Solexa, TruSeq, VeraCode, the pumpkin orange color, and the 遺伝子 tic Energy streaming bases design are trademarks or registered trademarks of Illumina, Inc. All other brands and names contained herein are the property of their respective owners.
2 Agenda イルミナシーケンシング計画 検討事項 データ解析時の背景コンセプト 主要な解析タイプ目的と前提
3 シーケンスデータ : リード FASTQ 形式ファイルとしてまとめられる FASTQ: 配列とクオリティースコアが含まれるファイル 500 万 ~ 30 億リードの情報が1 回のシーケンシングランで得られる FASTQファイルの例 1:N:0:CTTGTA TGAAACCAGTGTTCTTAATTGGCATTTTACACACACACACACAGAATTTAAAAAAAAAATCAAAGGAAATCATTCTAAATGTACTATGATAGCATGTTAAA + 1:N:0:CTTGTA CCAAACATTAAGTAACTCTTAAAATGGCACACAGGTTTTAAAGCTATTGGTTTTTCCTTCCTAACTCTCTGAATTTTTCCCCTGGCCTTTGTAGATCAACT + 1:N:0:CTTGTA TTGGGTAACTTGAATATAACATGGCTCCCTTGCTGTAAGCAAATGTTTTAGAGCTGAATTTTTCCTTTTTTTTTTTTTTTTTTTAAGCCAAGAAGTTCACC + HHHHHEHHHHHHFHHHHHHHHHHHHHHHHHHHGGFHHHHHHHHHHFHHHFHEHHFHEHHHHFHHHFHHHEHEHHHHHHHHHHH@?################
4 シーケンシング計画 リード数? ペアード (PE) かシングル (SR) か? リード長? これらはあくまでガイドラインが存在するのみ その時々の科学コミュニティーにより基準 標準が提示され るといえる
5 どの程度のデータ量を設定するのか? 実施したいアプリケーション 必要な検出感度 ゲノムサイズ等 により異なる fewer 総リード数 more ゲノムサイズ 小 大 アプリケーション RNA 発現解析 Whole genome Resequencing De Novo アセンブリ 検出感度 低 高
6 どの程度のデータ量を設定するのか? ( 例 ) アプリケーション生物種ゲノムサイズカバレッジ必要データ量 リシーケンシング Human 3.4 Gbp 20x 68 Gbp De Novo アセンブル Human 3.4 Gbp 70x 240 Gbp リシーケンシング Arabidopsis Gbp 20x 2.5 Gbp De Novo アセンブル RNA-Seq ( 遺伝子発現 ) Arabidopsis Gbp 60x 7.5 Gbp Human N/A 必要検出感度 による M リード / サンプル
7 ペアードで実施するかシングルで実施するか? ペアエンド (PE) やシングルリード (SR) シングルリード ペアードエンド 100bp 100bp 100bp library insert library insert ライブラリのインサートサイズから アライメント後の PE のリード間距離がどの程度であるか予め分かり マップ結果と比較し変異検出等に利用することができる 7
8 ペアードで実施するかシングルで実施するか? ペアエンドはアライメント結果にさらなる情報を加えることができる 100bp ライブラリインサート長 :400 bp 100bp インサートライブラリ + strand アライメント - strand アライメント リファレンスゲノム 400 bp の距離 200 bp gap 8
9 ペアードで実施するかシングルで実施するか? Application PE or SR? Note SNP 検出 ( リシーケンシング ) SR または PE coverage depth がキー Indel, 構造変異検出 ( リシーケンシング ) PE PE を前提とした検出解析方法のため De Novo ゲノム or トランスクリプトームアセンブル PE アセンブルの際に PE 情報が利用される RNA-Seq ( 発現 ) PE ( あるいはSR) 新規転写産物 遺伝子構造 を決めるためにPE 情報が必 要
10 リード長はどのように考えたらいいか? 36bp 50bp 100bp 150bp small RNA RNA RNA Indel と 構造変異検出 リシーケンシング De Novo アセンブル ( ゲノムあるいはトランスクリプトーム ) 遺伝子構造決定 ( ゲノムアノテーション ) 10
11 Coverage depth ゲノム上の位置あたりにマップされたリード数の平均 この図のカバレッジは?
12 Coverage depth 計算 ゲノム上の位置あたりにマップされたリード数の平均 この図のカバレッジは? - 4.5x ( 例 ) サイズ 0.1 Gbp のゲノムで考えたとき カバレッジ 30x を得るには リード長 100 bp で何リード必要と試算できるか?
13 Coverage depth 計算 ( 問 ) サイズ 0.1 Gbp のゲノムで考えたとき カバレッジ 30x を得るには リード長 100 bp で何リード必要と試算できるか? ( 解 ) 30 x 0.1Gbp = 3Gbp のデータ量 ( 塩基数 ) が必要 3G bp / 100 bp reads = 30K リード = 3 万リード * 弊社サイト MyIllumina にて Coverage Calculation Tech Note で検索していただきますと より詳細な説明が記載された テクニカルノートをダウンロードいただけます
14 Coverage depth について考える カバレッジが大きければシーケンスされたサンプル配列の信頼性はあがる例えばカバレッジ = 1 のとき ; これはSNPなのか? シーケンシングエラーなのか? リードが本来の位置でないところにマップされてしまっているのか? ACGTTGACGATAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG ACGTTGACGCTAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG
15 Coverage depth について考える カバレッジが大きければシーケンスされたサンプル配列の信頼性はあがる ACGTTGACGATAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG ACGTTGACGCTAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG ACGTTGACGCTAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG ACGTTGACGCTAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG ACGTTGACGCTAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG ACGTTGACGATAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG
16 例えば SNP 検出 ほとんどの SNP 検出器はこのような違いを SNP としては検出しない しかしながらもしこれらのリードサンプルが癌組織由来である場合は SNP である可能性は増加 ACGTTGACGATAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG ACGTTGACGCTAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG ACGTTGACGATAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG ACGTTGACGATAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG ACGTTGACGATAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG ACGTTGACGATAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG
17 例えば SNP 検出 一般的な SNP 検出器の前提 ; 全てのサンプルはディプロイド ( 二倍体 ) であると仮定 サンプルは最高でも 2 アリルまでであると仮定 allelic ratio は 程度であると仮定 データ解析に使用するソフトが当該のサンプルタイプと実験タイプに適したものを選ぶ必要がある ACGTTGACGATAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG ACGTTGACGCTAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG ACGTTGACGATAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG ACGTTGACGATAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG ACGTTGACGATAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG ACGTTGACGATAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTCAG
18 18 Key concepts in bioinformatic analysis
19 イルミナデータ解析の主要 2 タイプ リファレンスシーケンスを使用 リードをつなげてできるだけ正確に長くする ( ゲノム or トランスクリプトーム ) アライメント ( マッピング ) カウンティング De Novo アセンブリ 19
20 アライメントやリシーケンシングアプリケーション 通常 genomic DNA サンプル ( full genome, enriched, amplicon etc. ) リードをリファレンスゲノム配列に対してアライメント ( マップ ) リファレンスとリードで異なる箇所を検出
21 ショートリードマッピングには多くのコンピュータ資源が必要 もともとリードがあった ゲノムなど長配列上の位置を探し出す処理 最もリード配列にマッチしたリファレンス配列上の位置にアラインすることになる アライメントプログラムは以下を扱わねばならない 多数のリード配列に対し1つの長いリファレンス ( ターゲット ) 配列マルチプルヒットリードとゲノムとのミスマッチ
22 ショートリードマッピングには多くのコンピュータ資源が必要 An illustration Aligners_might_place_a_short_sequence_in_many_places_in_the_genome_sequence in en (2) (3) リードが短いと多くの位置にヒットしてしまい位置決めが難しい
23 ショートリードマッピングには多くのコンピュータ資源が必要 An illustration Aligners_might_place_a_short_sequence_in_many_places_in_the_genome_sequence in (2) in_the (1) en (3) enom (1) リードが短いと多くの位置にヒットしてしまい位置決めが難しい 長くすると多少よくなるが
24 ショートリードマッピングには多くのコンピュータ資源が必要 An illustration Aligners_might_place_a_short_sequence_in_many_places_in_the_genome_sequence in (2) in_the (1) place (2) en (3) enom (1) sequence (2) リードが短いと多くの位置にヒットしてしまい位置決めが難しい 長くすると多少よくなるが 変わらない場合もある
25 ショートリードマッピングには多くのコンピュータ資源が必要 An illustration Aligners_might_place_a_short_sequence_in_many_places_in_the_genome_sequence in (2) in_the (1) place (2) placed (0, 2) en (3) enom (1) sequence (2) リードが短いと多くの位置にヒットしてしまい位置決めが難しい 長くすると多少よくなるが 変わらない場合もある ミスマッチの考慮も重要で必要 (SNP 検出などに使われる )
26 ショートリードマッピングには多くのコンピュータ資源が必要 An illustration Aligners_might_place_a_short_sequence_in_many_places_in_the_genome_sequence in (2) in_the (1) place (2) placed (0, 2) en (3) enom (1) sequence (2) リードが短いと多くの位置にヒットしてしまい位置決めが難しい 長くすると多少よくなるが 変わらない場合もある ミスマッチの考慮も重要で必要 (SNP 検出などに使われる ) in place (1) PE 情報があると助かる
27 RNA-Seq RNA-Seq 遺伝子発現解析等に使われる 特定の遺伝子領域のリードの存在量が遺伝子転写産物の存在量を示していると考える リード発生量を測定 = カウンティングアプリケーション <RNA-Seq 図 > AAAAA AAAAA AAAAA AAAAA biological sample RNA pool convert to cdna Illumina sample prep sequencing
28 RNA-Seq RNA-Seq アプリケーションは アライメントから始まる RNA-Seqリードはエクソン領域にアラインされる エクソン領域内 ( エクソンボディー ) にアラインするイントロンをまたいだエクソンスプライスジャンクションにアラインする PE では複数のエクソンやスプライスジャンクションにわたるものにも対応 エクソン リファレンスゲノム リードカウント数が RNA 転写産物量に対応すると考える
29 RNA Seq 遺伝子発現レベルを比較するための正規化 発現量の計算はそのサンプルがマップされたリード数 総リード数 (coverage depth) に影響される サンプル A depth = 5 (50 Million 総リード ) サンプル B ( コントロール ) depth = 2 25 リード (10 Million 総リード ) サンプルはコントロールに対し 1/2 の遺伝子発現量 10 リード
30 RNA Seq 遺伝子発現レベルを比較するための正規化 リードカウント数は遺伝子の長さ ( 全 exon の長さ ) にも影響される 長ければ長いほどリードがマップされる数が多くなり易い < 異なる 3 つの遺伝子を想定 > 2 Kb 1 Kb 3 Kb Raw リードカウント 転写産物の長さで正規化後のリード数 2 4 1
31 De Novo アセンブリ リファレンスゲノムを使わず いちからリード配列をつなぎ合わせて元のゲノムを再構築することがゴール大量のリードを使う (Millions ~ Billions ) リード配列のオーバラップを利用しコンティグを作成する非常に計算リソースを消費する TGACGCTAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCT ACGTTGACGCTAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGAT GACGCTAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTC GCTAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCTC De Novo アセンブリはアライメントのアプローチとは全く異なる 参考 : M Baker (2012) De Novo genome assembly: what every biologist should know., Nature Methods 9:
32 De Novo アセンブリ (de Brujin graph) De Novo アセンブリでは全リードを k-mer に分解する ( 特定の長さのサブシーケンス に分解 ) kmer = 10 を適用した場合のイメージ ; TGACGCTAGCGTCTCAGTCTGATCATACAGTACGTTGACGATAGCGTCT TGACGCTAGC GACGCTAGCG ACGCTAGCGT CGCTAGCGTC etc. リード全長にわたり行われる全リードに対して繰り返し行われる 各 kmer の出現は頻度とともに記録される これを全リードに対して行う事で 存在する全ての k-mer とその頻度の詳述を作成 これらの情報を使って de Brujin グラフを構築する
33 De Novo アセンブリ (de Brujin graph) リード中にある全ての k-mer 間を通る路をみつけることで ゲノム配列をその路として 再構築 小ゲノムサイズの リピートの少ないゲノムで上手くいきやすい概ね50x 以上のカバレッジは必要 de novoアセンブルはアライメントよりずっと多くの計算リソースを消費する ( 計算がクラッシュすることなどは良くある ) de Brujinグラフについては論文 Wikipedia blogなどweb 上に多数の情報あり McComish, Hill, Biggs and Penny. Genome Biol Evol 2010: 2
34 まとめ イルミナシーケンシング計画 リード数 / リード長 / ペアード (PE) かシングル (SR) か カバレッジ アプリケーション毎の Scientific community 標準と 装置や試薬の対応範囲を参考 データ解析の目的と前提 2つの解析タイプ ( アライメント De Novo アセンブリ ) サンプルタイプにその解析ソフト選択があっているか 解析により得られる結果と意味 バイオインフォマティクスによる結果は仮説に対する 計算上の実験結果であり これを踏まえた上での解釈が必要
35 Appendix 弊社英語ホームページ Coverage Calculator Tech Note online コンテンツ : Illumina Technology online コンテンツ : CASAVA 1.8 文献 Bentley et al (2008) Accurate whole human genome sequencing using reversible terminator chemistry. Nature 456: 弊社日本語ホームページ webinar series 日本語版 Tech Note (* 全ての日本語版があるわけではありません ) 35
36 ご清聴ありがとうございました ご質問は でも承ります
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特論I
2016.02.01 版 講義室後ろにある USB メモリ中の hoge フォルダをデスクトップにコピーしておいてください 農学生命情報科学特論 I 第 3 回 東京大学大学院農学生命科学研究科アグリバイオインフォマティクス教育研究ユニット門田幸二 [email protected] Jun 25, 2014 1 講義予定 第 1 回 (2014 年 6 月 11 日 ) 西 :NSG
NGS_KAPA RNA HyperPrep Kit
シークエンシングワークフロー ライブラリー調製 サンプル 調製 末端修復 エンドポイントライブラリー増幅 A-TAILING アダプター ライゲーション サイズセレクション & サイズ確認 または リアルタイムライブラリー増幅 ライブラリー 定量 クラスター 増幅 KAPA RNA HyperPrep Kit illumina社用ライブラリー調製キット KAPA RNA HyperPrep Kit
第 10 回シーケンス講習会 RNA-seq library 調製法の特徴と選び方 理化学研究所 (RIKEN) ライフサイエンス技術基盤研究センター (CLST) 機能性ゲノム解析部門 (DGT) ゲノムネットワーク解析支援施設 (GeNAS) 野間将平
第 10 回シーケンス講習会 RNA-seq library 調製法の特徴と選び方 理化学研究所 (RIKEN) ライフサイエンス技術基盤研究センター (CLST) 機能性ゲノム解析部門 (DGT) ゲノムネットワーク解析支援施設 (GeNAS) 野間将平 l シーケンスをする目的は? 概略 l よいシーケンスライブラリーとは? RNA-seq ライブラリーのムリ ムダ ムラ l いろいろな RNA-seq
Adobe Acrobat DC 製品比較表
X X Adobe, the Adobe logo, Acrobat, the Adobe PDF logo, Creative Cloud, and Reader are either registered trademarks or trademarks of Adobe Systems Incorporated in the United States and/or other countries.
GWB
NGS データ解析入門 Web セミナー : 変異解析編 1 NGS 変異データ解析の手順 シークエンス 変異検出 マッピング データの精査 解釈 2 解析ワークフローと使用ソフトウェア シークエンスデータのインポート クオリティチェック 参照ゲノム配列へのマッピング 再アライメント 変異検出 CLC Genomics Workbench または Biomedical Genomics Workbench
PowerPoint プレゼンテーション
V1 次世代シークエンサ実習 II 本講義にあたって 代表的な解析の流れを紹介します 論文でよく使用されているツールを使用します コマンドを沢山実行します スペルミスが心配な方は コマンド例がありますのでコピーして実行してください /home/admin1409/amelieff/ngs/reseq_command.txt マークのコマンドは実行してください 実行が遅れてもあせらずに 応用や課題の間に追い付いてください
リード・ゲノム・アノテーションインポート
リード ゲノム アノテーションインポート 1 Location と Folder ロケーション フォルダ Genomics Workbenchではデータを以下のような階層構造で保存可能です フォルダの一番上位の階層を Location と呼び その下の階層を Folder と呼びます データの保存場所はロケーション毎に設定可能です たとえばあるデータは C ドライブに保存し あるデータは D ドライブに保存するといった事が可能です
ChIP-seq
ChIP-seq 1 ChIP-seq 解析原理 ChIP サンプルのフラグメントでは タンパク質結合部位付近にそれぞれ Forward と Reverse のリードがマップされることが予想される ChIP のサンプルでは Forward と Reverse のリードを 3 側へシフトさせ ChIP のピークを算出する コントロールサンプルでは ChIP のサンプルとは異なり 特定の場所に多くマップされないため
Microsoft PowerPoint - Focus error webinar 本番 RevC
トラブルシューティング編 : MiSeq でフォーカスエラーが出た! どうしたら良い? July 25, 2014 小林孝史イルミナ株式会社テクニカルサポート部テクニカルアプリケーションサイエンティスト 2014 Illumina, Inc. All rights reserved. Illumina, 24sure, BaseSpace, BeadArray, BlueFish, BlueFuse,
360_h1_4.ai
2008 EA Digital Illusions CE AB. Mirror's Edge and the DICE logo are trademarks or registered trademarks of EA Digital Illusions CE AB. All Rights Reserved. EA and the EA logo are trademarks or registered
Microsoft PowerPoint - 6_TS-0891(TS-0835(Custom TaqMan Assay Design Tool利用方法修正5.pptx
Custom TaqMan Assay Design Tool インターネットオーダー方法 20010/06/01 Custom TaqMan Assay Design Tool 1. Custom TaqMan SNP Genotyping Assays P.5 2. Custom TaqMan Gene Expression Assays P.21 3. カスタムデザインでのオーダー P.30
PowerPoint プレゼンテーション
CLC Genomics Workbench ~ アプリケーションおよびバージョン 8 新機能の紹介 ~ フィルジェン株式会社バイオサイエンス部 ([email protected]) 1 本日の内容 1. CLC Genomics Workbench 概要 2. 基本機能 3. 解析アプリケーション 4. バージョン 8 新機能 : デモンストレーション ( 一部 ) 5. その他機能 6.
PowerPoint Presentation
エピジェノミクス解析編 2016/08/10 Filgen ChIP-seq (Transfactor & Histone), Bisulfite webex seminar 株式会社キアゲンアプライドアドバンストゲノミクス宮本真理, PhD 1 アジェンダ ChIP-seq 解析 Transcription Factor ChIP-seq Histone ChIP-seq Bisulfite-seq
BaseSpaceで達成するSmall RNA発現解析
BaseSpace で達成する Small RNA 発現解析 March 28, 2016 寺倉伸治イルミナ株式会社アプリケーションコンサルタント 2015 Illumina, Inc. All rights reserved. Illumina, 24sure, BaseSpace, BeadArray, BlueFish, BlueFuse, BlueGnome, cbot, CSPro, CytoChip,
IonTorrentPGM_appnote_0319.indd
Ion PGM Heterogeneity * 1 * 1 * 2 * 2 * 2 * 2 * 2 * 1 *1 * 2 DNA DNA DNA ArcturusXT LCM Laser Capture Microdissection LCM A Workflow for Cancer Profiling Applied Biosystems ViiA7 PCR qpcr QC Assay Ion
Presentation Title Arial 28pt Bold Agilent Blue
Focus your next-gen sequencing on DNA that matters SOLiD 効率的活用の決め手 SureSelect によるターゲットシーケンスの紹介 次世代シーケンシングの問題点を解決 次世代シーケンサの欠点読みたい場所だけを選んでシーケンスできない SureSelect で解決読みたい場所だけを選んでシーケンスする 大量の不要データ 例えば DNA-Seq
CLC Genomics Workbench ウェブトレーニングセミナー: 変異解析編
CLC Genomics Workbench ウェブトレーニングセミナー : 遺伝子発現解析編 12 th Feb., 2016 フィルジェン株式会社バイオサイエンス部 [email protected] Feb., 2016_V2 1 遺伝子発現解析概要 本日のセミナーにおける解析の流れ及び使用するツール名 ( 図中赤枠部分 ) Case Control インポート インポート インポート
■リアルタイムPCR実践編
リアルタイム PCR 実践編 - SYBR Green I によるリアルタイム RT-PCR - 1. プライマー設計 (1)Perfect Real Time サポートシステムを利用し 設計済みのものを購入する ヒト マウス ラットの RefSeq 配列の大部分については Perfect Real Time サポートシステムが利用できます 目的の遺伝子を検索して購入してください (2) カスタム設計サービスを利用する
RNA-seq
RNA-seq 1 RNA-seq 解析フロー RNA-seq インポート クオリティチェック RNA-seq 発現差解析 この資料では RNA-seq からの説明となりますが インポート クオリティチェックについては サポート資料のページより内容をご確認いただけます 2 データ 発現解析用デモデータは 以下よりダウンロードいただけます ES 細胞 (ESC) と神経前駆細胞 (NPC) の発現解析を小さなデモデータで行えます
GWB_RNA-Seq_
CLC Genomics Workbench ウェブトレーニングセミナー : RNA-Seq 編 フィルジェン株式会社バイオサイエンス部 ([email protected]) 1 Advanced RNA-Seq プラグイン CLC Genomics Workbench 9.0 / Biomedical Genomics Workbench 3.0 以降で使用可能な無償プラグイン RNA-Seq
IonTorrent RNA-Seq 解析概要 サーモフィッシャーサイエンティフィックライフテクノロジーズジャパンテクニカルサポート The world leader in serving science
IonTorrent RNA-Seq 解析概要 2017-03 サーモフィッシャーサイエンティフィックライフテクノロジーズジャパンテクニカルサポート The world leader in serving science 資料概要 この資料は IonTorrent シーケンサーで RNA-Seq (WholeTranscriptome mrna ampliseqrna mirna) 解析を実施されるユーザー様向けの内容となっています
サンプルシート作成ツール: Illumina Experimental Manager(IEM)の使用方法 -最新バージョンIEMv1.15のご紹介-
サンプルシート作成ツール : Illumina Experimental Manager (IEM) の使用方法 - 最新バージョン v1.15.1 のご紹介 - 上利佳弘フィールドアプリケーションスーパーバイザー 25-Jul-2018 2017 Illumina, Inc. All rights reserved. For Research Use Only. Not for use in diagnostic
機能ゲノム学(第6回)
RNAseqによる 定 量 的 解 析 とqPCR マイクロアレイなど との 比 較 東 京 大 学 大 学 院 農 学 生 命 科 学 研 究 科 アグリバイオインフォマティクス 教 育 研 究 ユニット 門 田 幸 二 (かどた こうじ) http://www.iu.a.u-tokyo.ac.jp/~kadota/ [email protected] 1 自 己 紹 介 1995
AJACS18_ ppt
1, 1, 1, 1, 1, 1,2, 1,2, 1 1 DDBJ 2 AJACS3 2010 6 414:20-15:20 2231 DDBJ DDBJ DDBJ DDBJ NCBI (GenBank) DDBJ EBI (EMBL-Bank) GEO DDBJ Omics ARchive(DOR) ArrayExpress DTA (DDBJ Trace Archive) DRA (DDBJ
Microsoft PowerPoint _illumina_techsupport_session02_公開用_RevB [互換モード]
トラブルシューティング編 Nextera ライブラリー調製キットシリーズで期待通りのライブラリーを得るためのヒント March 6, 2015 150511 RevB: 一部修正 小林孝史イルミナ株式会社テクニカルサポート部テクニカルアプリケーションサイエンティスト 2014 Illumina, Inc. All rights reserved.illumina, 24sure, BaseSpace,
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AWS Client VPN ユーザーガイド AWS Client VPN: ユーザーガイド Copyright 2019 Amazon Web Services, Inc. and/or its affiliates. All rights reserved. Amazon's trademarks and trade dress may not be used in connection with
thermofisher.com mirVana miRNA mimics/inhibitors 検索マニュアル
thermofisher.com mirvana mirna mimics/inhibitors 検索マニュアル 2018 年 10 月版 The world leader in serving science mirna mimics/inhibitors 製品ラインナップ mirna mimics / inhibitors の製品ライナップ : Mimics : Gain-of-function
機能ゲノム学(第6回)
バイオインフォマティクス次世代シーケンサー (NGS) 編 東京大学大学院農学生命科学研究科アグリバイオインフォマティクス教育研究ユニット門田幸二 ( かどたこうじ ) http://www.iu.a.u-tokyo.ac.jp/~kadota/ [email protected] 1 バイオインフォマティクス人材育成講座 スタンダードコース 2 自己紹介 1995 年 3 月 高知工業高等専門学校
PowerPoint Presentation
CLC Microbial Genomics Module 株式会社キアゲングローバルインフォマティクスソリューションズ & サポートアプライドアドバンストゲノミクス宮本真理 Ph.D. Filgen WebEx seminar, 2015/07/16 (2015/07/30) 1 Agenda メタゲノミクス解析 製品概要 機能紹介 デモ Filgen WebEx seminar, 2015/07/16
Microsoft Word - 1 color Normalization Document _Agilent version_ .doc
color 実験の Normalization color 実験で得られた複数のアレイデータを相互比較するためには Normalization( 正規化 ) が必要です 2 つのサンプルを異なる色素でラベル化し 競合ハイブリダイゼーションさせる 2color 実験では 基本的に Dye Normalization( 色素補正 ) が適用されますが color 実験では データの特徴と実験の目的 (
プリント
2011.10 0570-016868 PHSIP 06-7634-9100 http://www2.acer.co.jp/support/ acer notebook New Series Acer Intel 160-00236-24-118F18F URL http://www.acer.co.jp/ Acer Inc. Acer Inc.2PC2010 3Gartner Dataquest
Axygen_16p.indd
Axygen AxyPrep A Corning Brand / Axygen AxyPrep MAG Axygen IMAG MSD AxyPrep MAG 50IMAG MSD 96 15 ml 50 ml 2 Axygen AxyPrep MAG PCR AxyPrep MAG PCR PCR PCR dntps PCR AxyPrep MAG PCR Buffer 100 bp 60 bp
初めての方でも大丈夫、クラウドを用いた簡単クリック情報解析
イルミナで AmpliSeq パネル解析をはじめよう 情報解析編 初めての方でも大丈夫 クラウドを用いた簡単クリック情報解析 寺倉伸治シニアフィールドアプリケーションサイエンティスト May/30/2018 2016 Illumina, Inc. All rights reserved. プレゼンテーションを始める前に 本資料で紹介しているイルミナ試薬の価格は 2018 年 4 月改定版の試薬消耗品価格表を参照しています
JBOD_2000_3000_series_PRN_PDS_v3.0-JP
Expansion Enclosures ストレージディスク拡張に対応する拡張ユニット (JBOD) Infortrend DS シリーズ GS/GSe シリーズの搭載ディスク拡張に対応します JB2000 JB3000 シリーズは 2U12 ベイから U ベイまでのマルチフォームファクタ対応ディスク拡張ユニット (JBOD) です ディスク拡張性能の高さは様々なストレージ 要求条件に対してデータサイズと予算に応じた最適なストレージ構成を実現します
Agilent Microarray Total Solution 5 5 RNA-Seq 60 mer DNA in situ DNA 5 2 QC 4200 TapeStation 2100 / mirna CGHCGH+SNP ChIP-on-chip 2 mirna QC
Microarray Agilent Microarray Total Solution Agilent Microarray Total Solution 5 5 RNA-Seq 60 mer DNA in situ DNA 5 2 QC 4200 TapeStation 2100 / mirna CGHCGH+SNP ChIP-on-chip 2 mirna QC RNA / mirna total
PowerPoint プレゼンテーション
Oncology Breakthrough ウェビナーシリーズ - 3 がん研究者のための FFPE サンプルからの変異解析 イルミナ株式会社マーケティング本部 2014 Illumina, Inc. All rights reserved. Illumina, 24sure, BaseSpace, BeadArray, BlueFish, BlueFuse, BlueGnome, cbot, CSPro,
PrimerArray® Analysis Tool Ver.2.2
研究用 PrimerArray Analysis Tool Ver.2.2 説明書 v201801 PrimerArray Analysis Tool Ver.2.2 は PrimerArray( 製品コード PH001 ~ PH007 PH009 ~ PH015 PN001 ~ PN015) で得られたデータを解析するためのツールで コントロールサンプルと 1 種類の未知サンプル間の比較が可能です
Parallels Desktop 7 クイックスタートガイド
PD7M-P1-411-1 Parallels Desktop 7 for Mac Parallels Desktop 7 for Mac および Parallels Desktop 7 Switch to Mac Edition 兼用 クイック スタート ガイド Copyright 1999-2011 by Parallels Holdings, Ltd. and its affiliates.
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Falcon Falcon Falcon 0 Falcon SECTION 01: TUBES Falcon Falcon Falcon Falcon 1mL / 0mL Falcon Falcon Falcon 0mL 1,000 RCF -0 0 0 0 ml Falcon Falcon 1..0 USP Falcon ISO001:00 ISO 0 Falcon x mm ml µm SECTION
steponeplus_bro_f-0912.indd
StepOnePlus /StepOne PCR PCR PCR StepOnePlus StepOne PCR PCR Features At A Glance StepOne StepOnePlus / 48 96 FAM /SYBR Green dyes VIC /JOE dyes ROX dyes 1. NED /TAMRA dyes VeriFlex Block StepOnePlus StepOne
機能ゲノム学(第6回)
RNA-Seq データ解析リテラシー 東京大学大学院農学生命科学研究科アグリバイオインフォマティクス教育研究ユニット門田幸二 ( かどたこうじ ) http://www.iu.a.u-tokyo.ac.jp/~kadota/ [email protected] 1 2009 年ごろの私 次世代シーケンサー (NGS) 解析についての認識 単に短い塩基配列が沢山あるだけでしょ 得られる配列データって
農学生命情報科学特論I
2015.07.01 版 USB メモリ中の hoge フォルダをデスクトップにコピーしておいてください 前回 (6/23) の hoge フォルダがデスクトップに残っているかもしれないのでご注意ください 農学生命情報科学 特論 I 第 3 回 大学院農学生命科学研究科アグリバイオインフォマティクス教育研究プログラム門田幸二 ( かどたこうじ ) [email protected]
