Microsoft Word - タンパク質溶液内酵素消化 Thermo

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いぶきやがい
6 years ago
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1 タンパク質の溶液内酵素溶液内酵素消化 ( 質量分析用サンプル調製 ) 質量分析計によるタンパク質解析においては一般的にタンパク質を還元アルキル化した後にトリプシン等で酵素消化して得られた消化ペプチドサンプルが用いられます本資料ではこのサンプル調製について専用キットを用いて行う方法各種試薬や酵素を用いて行う方法また関連情報としてタンパク質の定量法についてご紹介しています内容 1 培養細胞の酵素消化 ( キット使用 ) 2 組織の酵素消化 ( キット使用 ) 3 酵素消化法 ( 各種試薬や酵素を使用 ) 4 タンパク質定量 5 製品情報 1 培養細胞の酵素消化 ( キットを用いる方法 ) 哺乳類培養細胞については Pierce Mass Spec Sample Prep Kit for Cultured Cells (84840) により還元アルキル化 Lys-C および Trypsin を用いた酵素消化を行うことができます詳細はキットのインストラクションをご覧ください ( インストラクションはにてご覧いただけます ) 2 組織の酵素消化 ( キットを用いる方法 ) 組織サンプルについては Pierce Mass Spec Sample Prep Kit for Cultured Cells (84840) を組織サンプル用の改変プロトコルにより用いることで還元アルキル化 Lys-C および Trypsin を用いた酵素消化を行うことができます組織サンプル用のプロトコル改変内容 ( キットのインストラクションに対応 ) は下記の通りです ( インストラクションはにてご覧いただけます ) 改変の場所 : セクション B. Cell Lysis の 1 および 2 改変後の内容 : 組織 10mg を 5 倍容量の lysis buffer 中でホモジナイズ処理します ( この後は B. 3 に進みます ) 3 酵素消化消化法 ( 各試薬や酵素を用いる方法 ) キットを使わずに各試薬や酵素を用いてタンパク質を還元アルキル化酵素消化 (Lys-C およびトリプシン ) を行う方法です対象サンプルは一般的な方法で調製されたタンパク質溶液になりますが溶解しているバッファーの組成によっては適時バッファー交換が必要になりますサンプルはタンパク質が 50mM ammonium bicarbonate ph 8 または変性バッファー (8M Urea または 0.1% SDS を含む 50mM Tris ph 8) に溶解した溶液を前提にしています還元剤や -SH 基に反応する成分が含まれていると還元アルキル化に影響することがありますので沈殿再溶解

2 限外ろ過ゲルろ過透析などでバッファー交換してくださいなお Urea を含むバッファーでは加熱すると Urea が分解しタンパク質のカルバミル化が起こりますので温度が (37 以上に ) 上がらないように注意してくださいトリプシンはリジン (K) およびアルギニン (R) 残基の C 端側のペプチド結合を切断しますただしこれらアミノ酸の C 端側にプロリン残基がある場合や複数のリジンやアルギニンが隣接している場合切断がおきないことがあります Lys-C はリジン残基の C 端側のペプチド結合を切断します Lys-C とトリプシンの両方を使うことで消化効率を高めますトリプシンは ph 7-9 において活性を示し ph 4 以下では活性が低くなりますトリプシン消化用の一般的なバッファーとしては 50mM ammonium bicarbonate ph 8 50mM Tris ph 8 50mM triethylammonium bicarbonate (TEAB) ph 8.5 がありますトリプシンは 0.1% SDS 1M Urea 10% acetonitrile (ACN) に耐性があり共存下に使用できます高濃度の塩 (100mM 以上の NaCl など ) はトリプシンの活性に影響する場合があります Lys-C は ph において活性を示し消化用バッファーとして一般的なトリプシン消化用のバッファーを用いることができます Lys-C は 0.1% SDS 8M Urea 10% acetonitrile (ACN) に耐性があり共存下に使用できますアルキル化に用いる IAA (iodoacetamide) はシステイン (Cys) を修飾し質量が 57.02Da 大きくなりますデータベース検索の際は Cys を Carbamidemethyl, Fix(Static) として考慮してください A 使用試薬 DTT (20291, 20290) DTT 7.7mg を純水 100μL に溶解し 500mM DTT 溶液を調製します ( 用事調製 ) (20291 DTT, No-Weigh Format は DTT が 7.7mg ずつ小分け包装されており便利です ) IAA, Iodoacetamide Single-Use (90034) IAA 9.3 mg を純水 100μL に溶解し 0.5M IAA 溶液を調製します ( 用事調製 ) IAA は光に不安定のためなるべく光にあてないようにしてください (90034 Iodoacetamide, Single-Use は IAA が 9.3mg ずつ小分け包装されており便利です ) Lys-C Endoproteinase, MS Grade (90051) Lys-C を純水に溶解し 1 mg/ml ストック溶液を調製します使用分ずつ分注して -80 で保存します Trypsin, MS Grade (90057, 90058, 90059) トリプシンを 50 mm 酢酸に溶解し 1 mg/ml ストック溶液を調製しますこのストック溶液は-20 にて少なくとも1 年は安定ですが使用分ずつ分注して凍結融解の回数を抑えまた -80 に保存することをおすすめします B 還元アルキル化 1) タンパク質を 50mM ammonium bicarbonate ph 8 または変性バッファー(8M Urea または 0.1% SDS を含む 50mM Tris ph 8) に溶解します

3 還元アルキル化の効率を高めるために変性バッファーの使用をおすすめします Urea を用いる場合は酵素消化の前に除去または 1M 以下の濃度に希釈する必要があります Urea は加熱すると分解しタンパク質のカルバミル化が進みますので温度が (37 以上に ) 上がらないように注意してください他のバッファーを用いる場合バッファーに還元剤や -SH 基に反応する成分が含まれていると還元アルキル化に影響することがあります沈殿再溶解限外ろ過ゲルろ過透析などでバッファー交換してくださいタンパク質溶液は濃度 mg/ml に調製します 2) DTT 7.7mg を純水 100μL に溶解し 500mM DTT 溶液を調製します ( 用事調製 ) 3) 500mM DTT 溶液をタンパク質サンプル溶液に終濃度 20mM(1:25 希釈 ) となるように加え混合します 4) 60 にて 1 時間または 95 にて 10 分間インキュベートし還元反応を行います 5) IAA 9.3 mg を純水 100μL に溶解し 0.5M IAA 溶液を調製します ( 用事調製 ) IAA は光に不安定のためなるべく光にあてないようにしてください 6) 0.5M IAA 溶液を還元反応後のタンパク質サンプル溶液に終濃度 40mM(1:12.5 希釈 ) となるように加え混合します 7) 室温にて 30 分間インキュベートしアルキル化反応を行います ( 遮光下 ) 8) 500mM DTT 溶液を終濃度 10mM(1:50 希釈 ) となるように加え混合しアルキル化反応を止めます C 酵素消化 1) Lys-C を純水に溶解したストック溶液をタンパク質サンプル溶液に総タンパク質重量に対して 1:100(1:20 から 1:100) の比率 (w/w) で加え混合しますタンパク質サンプル溶液が Urea を含む場合は 1M 以下の濃度に希釈して使用しますタンパク質サンプル溶液が SDS を含む場合は 0.1% 以下の濃度に希釈して使用します希釈を行うとタンパク質濃度が低くなります沈殿 ( アセトン沈殿など ) 再溶解によりタンパク質濃度を下げずに Urea SDS を除去することができます沈殿再溶解は Urea SDS 以外の ( 酵素消化や LC-MS 測定に影響する可能性のある ) 夾雑物除去にも効果がありますので塩や界面活性剤を含むサンプルの場合は酵素消化の前に行うことをおすすめします沈殿させたタンパク質サンプルは再溶解し難いことがありますが多くの場合は酵素消化により溶解します界面活性剤の除去には Detergent Removal 製品を使用することもできますタンパク質濃度が 100μg/mL 以上のサンプルには Pierce Detergent Removal Resin(87780) または Spin Column (87776, 87777, 87778, 87779) タンパク質濃度が 1-100μg/mL のサンプルには HiPPR Detergent Removal Spin Column(88306) または Spin Column Kit(88305) をお使いください 2) 37 にて 2-4 時間インキュベートします 3) トリプシンを 50 mm 酢酸に溶解したストック溶液をタンパク質サンプル溶液に総タンパク質重量

4 に対して 1:50(1:20 から 1:100) の比率 (w/w) で加え混合します 4) 37 にて 4-24 時間インキュベートしますインキュベート中に溶液が蒸発して漏れる可能性がありますのでフィルム等でシールすることをおすすめします 5) サンプル溶液は-20 にて保管します ( 酵素消化反応を止めます ) 必要に応じて MS 測定の直前に C18 スピンカラム (89870, 89873) チップ (87781, 87782, 87783, 87784) によりクリーンアップを行います 4 タンパク質定量サンプル溶液のタンパク質定量は Pierce 660nm Protein Assay Kit (22662) を用いた 660nm 法または BCA Protein Assay Kit (23225, 23227) を用いた BCA 法などにより行うことができます 660nm 法は独自の色素金属複合体を用いることで還元剤界面活性剤 8M Urea などの共存下で測定が可能で BCA 法や Bradford 法よりも幅広いバッファー成分に対応した方法です一方イオン性界面活性剤を含むサンプル溶液は影響を受けるため測定が困難ですが IDCR (Ionic Detergent Compatibility Reagent, 22663) の添加で対応できる場合があります BCA 法はタンパク質存在下で生じる銅イオンキレート錯体の発色を利用した方法で界面活性剤や塩の影響を受けにくくまたタンパク質の種類 ( 構成アミノ酸 ) による呈色強度の差が小さいため定量精度が高い定量法です一方サンプル溶液に還元剤やキレート剤が含まれている場合は影響を受けるため測定が困難です還元剤存在下の測定は BCA Protein Assay Kit - Reducing Agent Compatible (23250) または Microplate BCA Protein Assay Kit - Reducing Agent Compatible (23252) の使用により対応できる場合があります 660nm 法と BCA 法の比較定量法測定波長共存可能物質の例測定阻害物質の例タンパク質間の強度差 660nm 562 nm 界面活性剤還元剤キレート剤小 BCA 660 nm 還元剤界面活性剤イオン性界面活性剤大 IDCR (Ionic Detergent Compatibility Reagent, 22663) の添加により利用可 660nm 法と BCA 法の主なバッファーに対する適合性バッファー定量法 Cell Lysis Buffer (84840 Pierce Mass Spec Sample Prep Kit for Cultured Cells) 660nm, BCA 50mM Ammonium bicarbonate ph 8 660nm, BCA 50mM Triethylammonium bicarbonate 660nm, BCA 8M Urea 660nm 0.1% SDS, 50mM Tris ph 8 660nm, BCA IDCR (Ionic Detergent Compatibility Reagent, 22663) の添加により利用可詳細は各キットのインストラクションをご覧ください ( インストラクションはにてご覧いただけます )

5 吸光度測定に NanoDrop を用いたタンパク質定量法については NanoDrop 用タンパク質定量プロトコルをご覧ください

6 5 製品情報製品コード説明包装酵素消化キット Pierce Mass Spec Sample Prep Kit for Cultured Cells 20-rxn kit 還元アルキル化 DTT (Dithiothreitol), No-Weigh Format 48 x 7.7mg DTT (Dithiothreitol) 5g Iodoacetamide, Single-Use 24 x 9.3mg 消化酵素 Lys-C Endoproteinase, MS Grade 20µg Trypsin Protease, MS Grade 5 x 20µg Trypsin Protease, MS Grade 5 x 100µg Trypsin Protease, MS Grade 1mg 界面活性剤除去 (Detergent Removal) Detergent Removal Resin 10mL Detergent Removal Spin Column, 125µL 25 column Detergent Removal Spin Column, 0.5mL 25 column Detergent Removal Spin Column, 2mL 5 column Detergent Removal Spin Column, 4mL 5 column HiPPR Detergent Removal Spin Column, 0.1mL 24 column HiPPR Detergent Removal Spin Column Kit 5mL kit クリーンアップ C18 Spin Column 25 column C18 Spin Column 50 column C18 Tip, 10µL bed 8 tip C18 Tip, 10µL bed 96 tip C18 Tip, 100µL bed 8 tip C18 Tip, 100µL bed 96 tip タンパク質定量 Pierce 660nm Protein Assay Kit 450mL Kit Ionic Detergent Compatibility Reagent 5 x 1 g BCA Protein Assay Kit 1L Kit BCA Protein Assay Kit 500mL Kit BCA Protein Assay Kit - Reducing Agent Compatible 250mL Kit Microplate BCA Protein Assay Kit - Reducing Agent Compatible 250mL Kit 製品情報インストラクションは弊社 web ( をご参照ください

TaKaRa Bradford Protein Assay Kit

研究用 TaKaRa Bradford Protein Assay Kit 説明書 v201701da TaKaRa Bradford Protein Assay Kit は Coomassie Dye を用いる Bradford 法に基づいたキットであり簡単な操作で迅速に濃度範囲が 1 ~ 1,000 μg/ml のタンパク質溶液の定量を行うことができます本キットの定量の原理は Coomassie