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パラメーターの設定がどうか また 微生物群の組成を明らかにできる分類学的な標識が 可能かどうか検討した 2. 方法 2.1. 実験微生物 A) B) Muse TM Cell Analyzer guava easycyte HT System guava easycyte System PERFLOW Sort BD Accuri TM C6 Flow cytometer BD FACSverse TM Flow cytometer BD TM LSR II Flow cytometer * 持ち運び可能な重量の機器 今回 微生物として大腸菌 (Eschelichia coli) 及び肺炎双球菌 (Klebsiella pneumoniae) を 用いた 本研究は 当該小型フローサイトメーターを用いた評価系の条件設定の確立を主 要目的として実施した そのため 上記の微生物は 食品製造に関わる発酵微生物ではな いが モデル細菌である大腸菌を中心に評価システムの設定を行った 2.2. 実験に使用した小型フローサイトメーター 本研究では 微細管搭載型の小型フローサイトメーター (Muse Cell Analyzer, ミリポア 社製 ) を用いた 本機器は 生物の光学検出のために 532 nm の緑色レーザーが光源と して搭載され 光源照射された微粒子 ( 細胞を含む ) からの前方散乱光および蛍光を検出 できる なお 本機器は 576/28 nm と 680/30 nm の 2 つのバンドパスフィルターを有し それぞれ黄色と赤色蛍光を検出するシステムとなっている (Millipore Corporation, 2013) 2.3. 微生物細胞の光学標識 微生物を蛍光標識するために Propidium Iodide(PI: 赤色蛍光 ) でエタノール固定した 微生物 DNA を染色した また 特定の微生物を検出するため Fluorescence in situ hybridization (FISH) 法の改良型高感度法の 1 つである Hybridization Chain Reaction (HCR)-FISH 法でエタノール固定した大腸菌の rrna を Cy3 で蛍光標識 ( 黄色蛍光 ) して 検出した なお HCR-FISH 法による大腸菌用プローブは 既報 (Yamaguchi et al., 2015) を参考に作成した 今回 小型フローサイトメーターを用いて 蛍光染色した微生物の細 胞サイズ (Forward scatter: FSC) 赤色または黄色蛍光強度を測定した また 小型機の性能 評価を目的として 純水のみ ( 測定ノイズ ) 非染色微生物および染色微生物を測定した また 分類学的標識として 未標識大腸菌 HCR-FFISH 標識大腸菌および HCR-FFISH 標 識大腸菌と肺炎双球菌の混合試料を測定した 0.001 0.01 0.1 1 10 0.1 1 10 100 機器サイズ (m 3 ) 前方散乱光検出分解能 (µ m) 図 1: カタログ上のフローサイトメーター特徴 ( 機器サイズ A と前方散乱光の分解能 B )

Forward scatter (cell size) 3. 結果と考察 3.1. 小型フローサイトメーターによる微生物細胞の認識小型フローサイトメーターは 複数のメーカーから販売されている 一般に フローサイトメーターを使用した FCM 法は 血球や動物細胞などの分析を主要目的としてきた 小型機器も基本的には 10 μm 以上の真核生物用に設計された機器が多い 細菌の細胞サイズは 1 μm 程度で 従来型の大型機器でも FSC で何とか検出できるかどうかという細胞サイズである 本研究で使用した機器もヒト細胞の測定を想定しており 微生物測定は必ずしも推奨されていない (Millipore Corporation, 2013) 今回 小型機器が微生物測定に活用できるか検討した その結果 蛍光色素で光学標識を必要とせずとも FSC のみで十分に測定ノイズと微生物を区別できた また FSC に加え 蛍光標識により蛍光強度の面でも測定ノイズからさらに分離できた ( 図 2) 以上の結果から 少なくとも当該小型機器は 酵母菌等の真核細胞性の発酵微生物のサイズに加え 細菌サイズの発酵微生物も検出可能と推定できる Red fluorescence intensity (PI) 図 2: 小型フローサイトメーターによる微生物細胞 ( 大腸菌 ) の検出 3.2.HCR-FISH 法を用いた微生物集団からの特定微生物の検出発酵生産に利用される発酵微生物は 先人達の長期に渡る品質追及の結果として 純系統株が多い しかし アクシデントや管理不足で野生種が混入すると 純系統株は野生種よりも弱く その増殖が阻害されたり 混入に気づかずに発酵プロセスに利用すると 最終製品の品質劣化の原因になる したがって DNA やタンパク質などの生物に共通した特徴を利用して生物の有無や数を検出 評価するだけでなく 特定の生物種だけを評価する技術も期待される FISH 法は 生物種ごとの特徴的配列を利用した分子系統解析に利用される rrna の配列に着目し 特定の rrna 配列とだけ結合する蛍光標識したオリゴ DNA プローブを用いて 特定の生物種を検出する技術である しかし 細菌の種類やその状態によっては生物活性が弱く 通常の FISH 法は微生物の検出には感度が不十分との報告が複数ある 実際に FISH 法の感度改善のために CARD-FISH 法や HCR-FISH 法など高感度 FISH 法が提案されている (Yamaguchi et al., 2015) 本研究では 小型フローサイトメーターを用いて HCR-FISH 法で標識した大腸菌を微生物集団から検出可能か検討した 本研究では 微生物集団から特定種を検出する前に

Red fluorescence intensity Forward scatter (cell size) HCR-FISH 法が上手く機能し 小型フローサイトメーターで大腸菌を評価できているか検討した その結果 未標識の大腸菌と比べ HCR-FISH 標識した大腸菌では十分な蛍光強度の増加を観察できた ( 図 3) 微生物種が異なると 細胞サイズや表面構造の違いを反映して 前方散乱光も相違がみられたが 種毎に区別できる程に明瞭ではなかった 一方 未標識の細菌の場合は 種が異なっても大きな蛍光強度の増加は確認されなかった Unstained E. coli Unstained K. pneumoniae Stained E. coli (HCR-FISH) Yellow fluorescence intensity (Cy 3) 図 3:HCR-FISH 法による微生物細胞 ( 大腸菌 ) の検出次に HCR-FISH 標識した大腸菌と未標識の肺炎双球菌を混合し 混合試料から HCR-FISH 標識した大腸菌を検出できるか評価した その結果 測定に使用する試料の細胞密度を制御することによって 小型フローサイトメーターで未標識の肺炎双球菌と HCR-FISH 標識した大腸菌とを明確に区別できた ( 図 4) 一方 試料中の細胞密度が一定濃度以上の場合は 複数細胞をまとめて評価しているようで 2 つの細胞群を明確に認識できなかった Unstained K. pneumoniae Stained E. coli (HCR-FISH) Yellow fluorescence intensity (Cy 3) 図 4:HCR-FISH 法による混合試料中における特定の微生物細胞 ( 大腸菌 ) の検出従来型の大型フローサイトメーターは シース液を使った Hydrodynamic focusing( 流体力学的絞り込み ) により 試料中の細胞集団の流れを単一縦列の流れに作りかえ 1 細胞ずつレーザー照射し 個々の細胞の光学特性を評価可能にしている これに対して 小型機は シース液を搭載しないことでコンパクト化と携帯性を実現している したがって 流体力学的絞り込みなしで単一縦列の流れに近い状況を作り出すために マイクロキャピ

ラリーに細胞集団を通過させ 個々の細胞の光学特性を評価できるように工夫している しかし 細菌の細胞サイズはマイクロキャピラリーよりも十分に小さい そのため 正確な測定のために 小型機販売のメーカーが推奨する測定対象 ( 真核生物細胞 ; 直径 10 μm 以上 ) よりも試料中の細胞密度の十分な制御が必要であるといえる 4. 結論当該小型機器は 細菌サイズの微生物も光学検出可能であった また HCR-FISH 法などの分類学的標識と試料中の細胞密度の調整により 混合試料から特定微生物の検出が可能であった 5. 謝辞 本研究は 公益財団法人サッポロ生物科学振興財団研究助成の支援により実施されまし た 関係各位に心より御礼申し上げます 6. 引用文献 Millipore Corporation. Muse TM Cell Analyzer User s Guide. Hayward, California, pp 1 124, 2013. T. Yamaguchi, S. Kawakami, M. Hatamoto, H. Imachi, M. Takahashi, N. Araki, T. Yamaguchi, K. Kubota. In situ DNA-hybridization chain reaction (HCR): a facilitated in situ HCR system for the detection of environmental microorganisms. Environmental Microbiology, pp. 2532-2541, 2015. T. Yamaguchi, B. M. Fuchs, R. Amann, S. Kawakami, K. Kubota, M. Hatamoto, T. Yamaguchi. Rapid and sensitive identification of marine bacteria by an improved in situ DNA hybridization chain reaction (quick HCR-FISH). Systematic and Applied Microbiology, pp. 400-405, 2015. 7. 本研究に関する学会報告等 冬野憂介, 高橋利幸 ; 迅速 簡便な微生物細胞レベルでのオンサイト センシング技術の 開発, 平成 27 年度日本水環境学会九州沖縄支部研究発表会,2016.