PrimeScript® One Step RT-PCR Kit Ver. 2 (Dye Plus)
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1 研究用 PrimeScript One Step RT-PCR Kit Ver. 2 (Dye Plus) 説明書 v201312da
2 PCR(Polymerase Chain Reaction) は 目的とする DNA 領域をはさむ 2 種のプライマーを用いて特定の DNA 塩基配列を増幅する反応です PCR 法は原理的に DNA を増幅する反応であり RNA は直接の鋳型とはなりえませんが 逆転写酵素によって RNA から cdna を合成後 目的領域を PCR 増幅する (RT-PCR) ことで RNA の解析に PCR 法を応用することが可能となります 現在までにこの RT-PCR 法により RNA の構造解析 効率の良い cdna クローニング RNA レベルでの発現解析など数多くの分野での応用が報告されています PrimeScript One Step RT-PCR Kit Ver.2 (Dye Plus) は RT-PCR を 1 本のチューブ内で連続的に行う 1 Step RT-PCR 用のキットです 反応途中で試薬を添加する必要がないため コンタミネーションの心配がありません さらに 反応液中に電気泳動に必要な色素 ( 青色と黄色の色素 ) と比重剤が含まれるため 反応液をそのまま電気泳動に供することができます 反応液は 鮮やかな緑色をしているのでゲルへのアプライが確実に行えます 本キットは逆転写酵素に伸長性に優れた PrimeScript RTase を PCR 酵素に増幅効率に優れた Hot Start PCR 用酵素 TaKaRa Ex Taq HS を使用し 反応液組成を色素および比重剤存在下で高度に至適化することにより 反応液組成に色素と比重剤を含まない従来品と同等の反応性を示します また PrimeScript RTase および RNase Inhibitor を One Step RT-PCR 用に高度に至適化し安定化剤とともにプレミックス化した PrimeScript 1 step Enzyme Mix と 反応バッファー dntp Mixture および 1 step Enhancer Solution とともに色素および比重剤をプレミックス化した 2 1 step Buffer(Dye Plus) を使用することで 反応液の調製および電気泳動解析のための操作を大幅に簡略化できます さらに タカラバイオの RT-PCR テクノロジーを組み合わせた本キットは次のような特長を示します 効率よく RT-PCR 増幅産物を取得可能 反応液調製が簡単 反応液はそのまま電気泳動にアプライ可能 50 で効率よく逆転写反応が進むよう最適化した反応系により 非特異的な増幅を最小限に抑制 反応液調製時などサイクル前のミスプライミングやプライマーダイマーに由来する非特異的増幅も抑制 本キットには 逆転写反応による RNA からの cdna 合成 PCR による cdna 増幅に必要なすべての試薬が含まれます I. キットの内容 (50 回用 ) 1.PrimeScript 1 step Enzyme Mix 100 μl step Buffer(Dye Plus) 625 μl 2 3.Control F-1 Primer *1 (20 μm) 20 μl 4.Control R-1 Primer *2 (20 μm) 20 μl 5.Positive Control RNA( copies/μl) 20 μl 6.RNase Free dh2o 625 μl 2 * 1:Positive Control RNA 用上流センスプライマー * 2:Positive Control RNA 用下流アンチセンスプライマー 各プライマーのシーケンス プライマー名 シーケンス Control F-1 Primer -CTGCTCGCTTCGCTACTTGGA- Control R-1 Primer -CGGCACCTGTCCTACGAGTTG- 2
3 Positive Control RNA 本キットに添付されている Positive Control RNA は SP6 promoter 領域下流に pbr322 由来のテトラサイクリン耐性遺伝子を含む約 1.4 kb の断片を挿入したプラスミド psptet3 を鋳型として SP6 RNA Polymerase を用いて in vitro transcription により合成を行ったものである SP6 Promoter Tetracycline Resistance Gene Hind III BamH I Sal I EcoR V Sph I AAAA... F-1 Primer R-1 Primer 462 bp 図 1. コントロール RNA:Control Primer を用いた場合の増幅断片 キット以外に必要な試薬 機器 ( 主なもの ) 1. 遺伝子増幅システム (authorized instruments) TaKaRa PCR Thermal Cycler Dice Touch( 製品コード TP350) TaKaRa PCR Thermal Cycler Dice Gradient/Standard( 製品コード TP600/TP650) など 2. アガロースゲル Agarose L03( 製品コード 5003/5003B) など 3. 電気泳動装置 Mupid-2plus( 製品コード M-2P) Mupid-exU( 製品コード EXU-1) など 4. マイクロ遠心機 5. マイクロピペットおよびチップ ( オートクレーブ処理したもの ) II. 保存
4 III. 原理 PrimeScript One Step RT-PCR Kit Ver.2 (Dye Plus) では まず PrimeScript RTase による RNA からの cdna 合成を行い 引き続き同じ反応系のまま TaKaRa Ex Taq HS による PCR 増幅を行います mrna Synthesis of first strand cdna with PrimeScript RTase cdna Second strand cdna Synthesized with TaKaRa Ex Taq HS Amplify cdna 図 2.PrimeScript One Step RT-PCR Kit Ver.2 (Dye Plus) の原理 IV. 特長 RNA テンプレート 増幅サイズ PrimeScript 1 step Enzyme Mix 2 1 step Buffer (Dye Plus) 1st strand cdna 合成用プライマー 操作 全般 8 kb の増幅を確認 逆転写酵素 (PrimeScript RTase) DNA Polymerase(TaKaRa Ex Taq HS) RNase Inhibitor を含む 反応バッファー dntp Mixture( 最終濃度 400 μm) 1 Step Enhancer Solution 色素 比重剤を含む 特異的下流プライマー (Oligo dt プライマーやランダムプライマーは使用不可 ) 1 本のチューブ内で連続的に RT-PCR を行う 4
5 V. 操作上の注意 本キットを使用する場合の注意事項です 使用前に必ずお読みください 1. 反応液は 数回 ~ 10 回分ぐらいを Master Mix としてまとめて調製すると便利です Master Mix を作ることにより ピペッティングによるロスや 試薬の分注 撹拌回数が少なくなり 正確な試薬の分注を行うことができます その結果 実験間のデータのばらつきも防げます 2. PrimeScript 1 step Enzyme Mix は使用前に軽く遠心して チューブの底に落としてください また 50% グリセロール溶液形状であり粘度が高くなっていますので 注意深くゆっくりとピペッティングを行ってください step Buffer(Dye Plus) は使用前によく vortex をした後 軽く遠心してから使用してください 4. PrimeScript 1 step Enzyme Mix は使用直前まで 20 で保存し 使用後は直ちに 20 に保存してください 5. Positive Control RNA は 分解を防ぐためにできる限り凍結融解は避けてください 少量ずつ分注後保存することをお勧めします 可能であれば 70 ~ 80 での保存をお勧めします 6. 試薬の分注を行うときは必ず新しいディスポーザブルチップを用い サンプル間のコンタミネーションを極力防止してください 7. 本キットによる逆転写反応には 特異的なプライマーを用います Random Primer や Oligo-dT Primer は使用できません 5
6 VI. 操作 1. 下記に示す反応液を調製する 試薬 使用量 最終濃度 PrimeScript 1 step Enzyme Mix 2 μl 2 1 step Buffer(Dye Plus) 25 μl 上流 Primer(20 μm) *1 ( センス ) 1 μl 0.4 μm 下流 Primer(20 μm) *2 ( アンチセンス ) 1 μl 0.4 μm Template RNA X μl *3 (or Positive Control RNA 1 μl ) RNase Free dh2o up to 50 μl * 1:Positive Control RNA の場合 F-1 Primer * 2:Positive Control RNA の場合 R-1 Primer * 3:total RNA の場合は 1 μg 以下を推奨 2. 調製したチューブをサーマルサイクラーにセットし 至適プログラムで RT-PCR を行う 一般的な反応条件 (A)PCR を 3 step で行う場合 min min sec. 55 ~ sec. 25 ~ 30 cycles 72 1 min./kb (B)PCR を 2 step で行う場合 min min sec min./kb 25 ~ 30 cycles Positive Control RNA の場合 min min sec sec. 25 cycles 72 1 min コントロール反応では 462 bp が増幅される 3. PCR 反応終了後の反応液の一部 ( 約 5 μl) をそのまま電気泳動に供する 電気泳動時の色素マーカーについて反応液 5 μl を 1% Agarose L03 で泳動した場合 青色マーカーは 3 ~ 5 kb 付近 黄色マーカーは 50 bp 以下の位置に確認できる 6
7 VII.PCR 条件について 変性条件 PCR サイクルの変性条件は サーマルサイクラーの使用機種と反応チューブの種類に合わせて設定してください 設定の目安は 98 5 ~ 10 秒あるいは ~ 30 秒です アニーリング温度コントロール RNA の場合 60 に設定して PCR を行いますが 実際のサンプルでは最適条件が変わります 55 ~ 65 で至適条件を検討してください 必要があれば 範囲を広げて (45 ~ 65 ) 検討してください 伸長時間伸長時間は ターゲットの鎖長にあわせて変更します TaKaRa Ex Taq HS では 72 で 1 kb あたり 1 分を目安に設定してください サイクル数 cdna が少ない場合は 40 ~ 50 cycles で行ってください 本キットを用いて増幅した PCR 産物のほとんどは 末端に A が 1 塩基付加されています したがって その PCR 産物をそのまま T-Vector にクローニングすることが可能です T-Vector へのクローニングには Mighty TA-cloning Kit( 製品コード 6028) をご利用ください また 末端平滑化およびリン酸化を行って 平滑末端ベクターにクローニングすることも可能です 平滑末端ベクターへのクローニングには Mighty Cloning Reagent Set (Blunt End)( 製品コード 6027) をご利用ください VIII. 実施例 (1) マウス心臓由来 total RNA または HL60 細胞由来 total RNA を鋳型として 様々な長さのターゲット遺伝子を本キットのプロトコールに従い 1 step RT-PCR で増幅しました Target gene Dystrophin トランスフェリンレセプター (TFR) サイクリン D2(CCND2) 使用 total RNA マウス心臓由来 HL60 細胞由来 HL60 細胞由来 ( 各 1 μg 使用 ) RT-PCR 条件 : 0.5 ~ 6 kb 8 ~ 12 kb min min min min sec sec sec. 30 cycles 68 1 min./kb 72 1 min./kb 30 cycles 7
8 M M2 1:TFR 2:CCND2 3:CCND2 4:TFR 5:Dystrophin 6:Dystrophin 7:Dystrophin M1:pHY Marker M2:λ-Hind III digest 0.5 kb 2.1 kb 2.8 kb 4.4 kb 6 kb 8 kb 12 kb 0.5 ~ 8 kb で 良好な伸長と増幅が確認できました (2) HL60 total RNA を鋳型として 本キットのプロトコールに従い 1 step RT-PCR で GAPDH 遺伝子の検出感度を測定しました ターゲット : GAPDH 428 bp RT-PCR 反応条件 : min min sec sec. 40 cycles 72 1 min. M M 鋳型 (total RNA) 量 1:0.01 pg 2: 0.1 pg 3: 1 pg 4: 10 pg M:100 bp DNA Ladder total RNA 量 0.1 pg から検出が可能でした 8
9 IX.RNA サンプルの調製について 本キットは RNA から cdna 合成 増幅を行うキットです cdna 合成を成功させるためには純度の高い RNA サンプルを得ることが大切です そのため 細胞内に含まれる RNase の作用を抑えること また使用する器具や溶液などの外部からの RNase の混入を避けることが大切です RNA 調製にあたっては 実験者の汗や唾液に含まれる RNase を防ぐため作業中は不必要に話さず 清潔なディスポーザブルグローブを着用し RNA 調製専用の実験台を設けるなどの細心の注意を払ってください 器具 実験器具に関しては 可能な限りディスポーザブルのプラスチック製品を使用してください 一般のガラス器具は以下の処理を行ってから使用してください (1) ガラス器具を 0.1% ジエチルピロカーボネート (DEPC) 溶液で 時間処理する (2) 残存 DEPC を除去するために オートクレーブ ( 分 ) にかける また 実験台 実験器具 チューブなどの RNase 除去には RNase-OFF (RNase コンタミネーション除去溶液 )( 製品コード 9037) の使用をお勧めします RNA 実験に用いる器具 ( プラスチックおよびガラス ) は 他の器具と区別して RNA 専用として使用してください RNA サンプルの調製法 RT-PCR 法に用いる RNA サンプルは 通常少量の RNA があればよい場合が多いので簡便な精製法が用いられることもありますが できれば GTC 法 ( グアニジンチオシアネート法 ) 等で高純度に精製した RNA を用いることをお勧めします 培養細胞や組織サンプルからの高純度 total RNA の調製には スピンカラムタイプの NucleoSpin RNA( 製品コード /.50/.250) や AGPC 法の簡便化試薬である RNAiso Plus( 製品コード 9108/9109) が便利です 血液サンプルには NucleoSpin RNA Blood( 製品コード /.50) や RNAiso Blood( 製品コード 9112/9113) をご利用ください total RNA からの mrna の調製には Oligotex-dT30 <Super>( 製品コード W9021A/B) または Oligotex-dT30 <Super> mrna Purification Kit ( 製品コード 9086) を用いると 迅速かつ効率的に mrna を回収することができます 9
10 X. 関連製品 PrimeScript Reverse Transcriptase( 製品コード 2680A/B/C) PrimeScript II Reverse Transcriptase( 製品コード 2690A/B/C) PrimeScript RT-PCR Kit( 製品コード RR014A/B) PrimeScript High Fidelity RT-PCR Kit( 製品コード R022A/B) PrimeScript II High Fidelity RT-PCR Kit( 製品コード R023A/B) PrimeScript One Step RT-PCR Kit Ver.2( 製品コード RR055A/B) PrimeScript II High Fidelity One Step RT-PCR Kit( 製品コード R026A/B) PrimeScript 1st strand cdna Synthesis Kit( 製品コード 6110A/B) PrimeScript II 1st strand cdna Synthesis Kit( 製品コード 6210A/B) TaKaRa PCR Thermal Cycler Dice Touch( 製品コード TP350) TaKaRa PCR Thermal Cycler Dice Gradient/Standard( 製品コード TP600/TP650) Agarose L03 TAKARA ( 製品コード 5003/5003B) RNase-OFF (RNase コンタミネーション除去溶液 )( 製品コード 9037) NucleoSpin RNA( 製品コード /.50/.250) NucleoSpin RNA Blood( 製品コード /.50) RNAiso Plus( 製品コード 9108/9109) RNAiso Blood( 製品コード 9112/9113) Oligotex-dT30 <Super>( 製品コード W9021A/B) Oligotex-dT30 <Super> mrna Purification Kit (From Total RNA)( 製品コード 9086) Mighty TA-cloning Kit( 製品コード 6028) Mighty Cloning Reagent Set (Blunt End)( 製品コード 6027) XI. 注意 本製品は 研究用試薬です ヒト 動物への医療 臨床診断には使用しないようご注意ください また 食品 化粧品 家庭用品等として使用しないでください タカラバイオの承認を得ずに製品の再販 譲渡 再販 譲渡のための改変 商用製品の製造に使用することは禁止されています ライセンスに関する最新の情報は弊社ウェブカタログをご覧ください PrimeScript TaKaRa Ex Taq Thermal Cycler Dice はタカラバイオの登録商標です RNase-OFF はタカラバイオの商標です その他 本説明書に記載されている会社名および商品名などは 各社の商号 または登録済みもしくは未登録の商標であり これらは各所有者に帰属します 10
11 NOTICE TO PURCHASER: LIMITED LICENSE [M57] LA Technology This product is covered by the claims 6-16 outside the U.S. corresponding to the expired U.S. Patent No. 5,436,149. [M79] RT-PCR (Dye Plus) This product is the subject of the pending JP patent application. 11
12 v201312da
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Microsoft Word - FMB_Text(PCR) _ver3.doc
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19-02 One-step RT-PCR Kit RT-PCR Quick Master Mix (Code No. PCR-311F) 取扱説明書 TOYOBO CO., LTD. Life Science Department OSAKA JAPAN A3647K - 目次 - [1] はじめに 1 [2] 製品内容 2 [3] 使用方法 3 [4] 実施例 5 [5] 関連プロトコル 6 [6]
small RNA Cloning Kit
研究用 small RNA Cloning Kit 説明書 v201212da 目次 I. 製品説明...3 II. キットの内容...4 III. 輸送 保存...6 IV. キットを使用する前の準備 注意点 1. 器具類の滅菌法...6 2. 試薬類の調製法...6 3.RNA サンプルの調製について...6 V. プロトコール V-1. small RNA の BAP 処理...8 V-2.
無細胞タンパク質合成試薬キット Transdirect insect cell
発現プラスミドの構築 1. インサート DNA の調製開始コドンは出来るだけ 5'UTR に近い位置に挿入して下さい 経験的に ptd1 の EcoRV/KpnI サイトへのライゲーション効率が最も高いことを確認しています 本プロトコルに従うと インサートサイズにも依りますが 90% 以上のコロニーがインサートの挿入されたクローンとして得られます 可能な限り EcoRV/KpnI サイトへ挿入されるお奨めします
PG1571-PJT1690-COL02509-MP T2_J.indd
molecular biology Marketplace MOLECULAR BIOLOGY GREATEST HITS IPTG X-Gal DNA DNA PCR dntp Thermo Scientific off Essentials Tour 2016 2016 10 3 2016 12 22 www.thermofisher.com/marketplace Thermo Scientific
Western BLoT Rapid Detect
研究用 Western BLoT Rapid Detect 説明書 v201212 Western BLoT Rapid Detect は 標識二次抗体の代わりに独自の IgG Detector(HRP labeled) を利用して一次抗体を検出するウェスタンブロッティング専用の検出試薬キットです 本製品を利用することで 標識二次抗体を用いて検出する従来法ではできなかった迅速検出 高感度検出 シグナルの増強
(2) (2) (3) (3) (4) ABI PRISM 7700 TaqMan (4) Roche LightCycler TM (5) BioFlux LineGene TaqMan (6) 1 RT-PCR (7) (9) (10) F. Hoffmann-La Roche Ltd. Roc
05-8 Realtime PCR Master Mix (Code No. QPK-101, QPK-101T) TOYOBO CO., LTD. Life Science Department OSAKA JAPAN A3313K (2) (2) (3) (3) (4) ABI PRISM 7700 TaqMan (4) Roche LightCycler TM (5) BioFlux LineGene
(2) (2) (3) (3) (5) ABI PRISM 7700 (5) Roche LightCycler TM (7) BioFlux LineGene (9) 1 RT-PCR (10) (12) (13) F. Hoffmann-La Roche Ltd. Roche Molecular
05-8 SYBR Green Realtime PCR Master Mix (Code No. QPK-201, QPK-201T) TOYOBO CO., LTD. Life Science Department OSAKA JAPAN A3314K (2) (2) (3) (3) (5) ABI PRISM 7700 (5) Roche LightCycler TM (7) BioFlux
リアルタイムPCRの基礎知識
1. リアルタイム PCR の用途リアルタイム PCR 法は 遺伝子発現解析の他に SNPs タイピング 遺伝子組み換え食品の検査 ウイルスや病原菌の検出 導入遺伝子のコピー数の解析などさまざまな用途に応用されている 遺伝子発現解析のような定量解析は まさにリアルタイム PCR の得意とするところであるが プラス / マイナス判定だけの定性的な解析にもその威力を発揮する これは リアルタイム PCR
O-157(ベロ毒素1 型、2 型遺伝子)One Shot PCR Typing Kit Ver.2
食品 環境分析用 O-157( ベロ毒素 1 型 2 型遺伝子 ) One Shot PCR Typing Kit Ver.2 説明書 v201811da O157:H7 をはじめとする腸管出血性大腸菌 (EHEC) は 血便と激しい腹痛を伴う出血性大腸炎 さらには溶血性尿毒症症候群を引き起こす病原性大腸菌の一群です これらの重篤な症状の原因は EHEC が産生する細胞毒素であるベロ毒素です EHEC
(2) (3) (3) (4) (5) ABI PRISM 7700 (5) Roche LightCycler TM (7) BioFlux LineGene (9) (10) (12) F. Hoffmann-La Roche Ltd. Roche Molecular Systems Inc.
06-08 SYBR Green Realtime PCR Master Mix -Plus- (Code No. QPK-211, 211T) TOYOBO CO., LTD. Life Science Department OSAKA JAPAN (2) (3) (3) (4) (5) ABI PRISM 7700 (5) Roche LightCycler TM (7) BioFlux LineGene
EpiScope® ChIP Kit (anti-mouse IgG)
研究用 EpiScope ChIP Kit (anti-mouse IgG) 説明書 v201802da クロマチン免疫沈降 (ChIP; Chromatin Immunoprecipitation) は 生きた細胞内のタンパク質 - DNA 間の相互作用を解析する方法の 1 つで 修飾ヒストンや転写因子などのクロマチン関連タンパク質のゲノム上局在解析に利用されています 本キットには クロスリンク処理後の細胞からの
cDNA cloning by PCR
cdna cloning/subcloning by PCR 1. 概要 2014. 4 ver.1 by A. Goto & K. Takeda 一般的に 細胞または組織由来の RNA から作製した cdna(cdna pool) から 特定の cdna をベクターに組み込む操作を cdna cloning と呼ぶ その際 制限酵素認識配列を付与したオリゴ DNA primer を用いた PCR
DNA Ligation Kit <Mighty Mix>
製品コード 623 研究用 DNA Ligation Kit < Mighty Mix > 説明書 v21512da DNA フラグメントのライゲーションは 遺伝子操作実験で頻繁に行う操作です DNA 間の結合には T4 DNA Ligase が用いられますが DNA の末端構造によって反応速度は著しく異なります そのため DNA の末端形状にあわせて加える酵素量や反応時間を調節する必要があります
Microsoft Word - H30eqa麻疹風疹実施手順書(案)v13日付記載.docx
平成 30 年度外部精度管理事業 課題 1 麻疹 風疹 実施手順書 ( ウイルスの核酸検出検査 ) 1) 検体を受け取りましたら 外部精度管理事業ホームページ (https://www.niid.go.jp/niid/ja/reference/eqa.html) にてお手続きください 2) 検体到着後 各チューブのスピンダウンを行ってから 500 マイクロリットルの Nuclease-free water
鳥インフルエンザA(H7N9)ウイルス検出マニュアル(第2版)公開用
鳥インフルエンザ A(H7N9) ウイルス 検出マニュアル ( 第 2 版 ) 1 目次 1 臨床検体またはウイルス培養液からの RNA の抽出 ( 参考 ) ---------- 3 2 リアルタイム RT-PCR(TaqMan Probe 法 ) による鳥インフルエンザ A(H7N9) ウイルスの検出方法 ---------- 4 3 Conventional RT-PCR 法よる鳥インフルエンザ
Cycleave®PCR呼吸器系感染症起因ウイルス検出キット Ver.2
研究用 Cycleave PCR 呼吸器系感染症起因ウイルス検出キット Ver.2 説明書 Ver.2 より 製品内容が変更になりました v201312da 呼吸器系感染症は 様々な病原菌やウイルスによって引き起こされます 呼吸器系感染症に対して適切な治療を行うためには 原因となる病原菌 ウイルスを特定する必要がありますが ウイルスに関しては臨床症状だけで同定することは困難です また 同定のためのウイルス分離や血清学的検査は時間がかかるため
遺伝子検査の基礎知識
リアルタイム PCR(Probe 法 ) 実験ガイドこの文書では Probe 法によるリアルタイム PCR について 蛍光検出の原理や実験操作の流れなどを解説します 実際の実験操作の詳細については 各製品の取扱説明書をご参照ください - 目次 - 1 蛍光検出の原理 2 実験に必要なもの 3 実験操作法 4 結果の解析 1 蛍光検出の原理 サイクリングプローブによる検出系 (Cycleave PCR
培養細胞からの Total RNA 抽出の手順 接着細胞のプロトコル 1. プレート ( またはウエル ) より培地を除き PBSでの洗浄を行う 2. トリプシン処理を行い 全量を1.5ml 遠心チューブに移す スクレイパーを使って 細胞を掻き集める方法も有用です 3. 低速遠心 ( 例 300 g
Maxwell RSC simplyrna Cells / Tissue Kit ( カタログ番号 AS1340/AS1390) 簡易マニュアル 注意 : キットを受け取りましたら 1-Thioglycerolを取り出し キット箱は室温で保存してください 取り出した1-Thioglycerolは2~10 で保存してください ご用意いただくもの 細胞 組織の両方の場合で共通 ボルテックスミキサー ピペットマン
CycleavePCR®ウシ白血病ウイルス (BLV)検出キット
研究用 CycleavePCR ウシ白血病ウイルス (BLV) 検出キット 説明書 v201103da ウシ白血病ウイルス (bovine leukemia virus;blv) は 血液や乳汁の B リンパ球の DNA にプロウイルスとして組み込まれるレトロウイルスです 日本においてこのウイルスに感染したウシの割合は 20% と言われており 感染してから発症までが 5 ~ 10 年以上と長く また
解析法
1.Ct 値の算出方法 Ct 値の算出方法には 閾値と増幅曲線の交点を Ct 値とする方法 (Crossing Point 法 ) の他に 増幅曲線の 2 次導関数を求めてそれが最大となる点を Ct 値とする方法がある (2nd Derivative Maximum 法 ) 前者では 閾値を指数関数的増幅域の任意の位置に設定して解析するが その位置により Ct 値が変化するので実験間の誤差が大きくなりやすい
pBAsi DNA シリーズ
研究用 pbasi DNA シリーズ 説明書 v201603da 目次 I. 製品説明と原理... 3 II. 準備 : ヘアピン型 RNA を発現させるための DNA 合成... 5 III. pbasi ベクターへのヘアピン型 RNA 発現のための合成 DNA の挿入... 6 III-1. 必要な器具 装置... 6 III-2. 用意するもの... 6 III-3. ベクターおよびインサート
Cycleave®PCR 肉種判別キット(6種)
食品 環境分析用 Cycleave PCR 肉種判別キット (6 種 ) 説明書 v201209da 目次 I. キットの内容...4 II. 保存...5 III. キット以外に必要な試薬 機器 ( 主なもの )...5 IV. 操作上の注意...5 V. 操作...6 V-1. 検体の調製例...6 V-2. リアルタイム PCR 用増幅装置の準備...6 V-3. 反応液の調製...7 V-4.
KOD FX 説明書.pdf
14-04 取扱説明書 高成功率 PCR 酵素 KOD FX Code No. KFX-101 Code No. KFX-101X5 Code No. KFX-101X10 保存温度 -20 本製品は KOD DNA Polymerase をベースに開発された高性能 PCR 試薬です 優れた 増幅成功率 伸長性 増 幅効率 を示し 幅広い PCR において確実な結果を期待できます また 本酵素には
NGS_KAPA RNA HyperPrep Kit
シークエンシングワークフロー ライブラリー調製 サンプル 調製 末端修復 エンドポイントライブラリー増幅 A-TAILING アダプター ライゲーション サイズセレクション & サイズ確認 または リアルタイムライブラリー増幅 ライブラリー 定量 クラスター 増幅 KAPA RNA HyperPrep Kit illumina社用ライブラリー調製キット KAPA RNA HyperPrep Kit
リアルタイム PCR 用試薬 Luna Universal qpcr & RT-qPCR be INSPIRED drive DISCOVERY stay GENUINE
リアルタイム PCR 用試薬 Luna Universal qpcr & RT-qPCR be INSPIRED drive DISCOVERY stay GENUINE 用途に最適な qpcr 試薬を提供 -Step RT-qPCR 2-Step RT-qPCR RNA RNA 逆転写 cdna cdna 逆転写 & qpcr Luna Universal One-Step RT-qPCR Kit
ノーウオ―クウイルスのPCR法
厚生労働科学研究新型インフルエンザ等新興 再興感染症研究事業 現在 国内で分離 同定できないウイルス性出血熱等の診断等の対応方法に関する研究 班より SFTS ウイルス検査マニュアル 平成 25 年 3 月 13 日 RT-PCR 法により SFTS ウイルス核蛋白質 (NP) 遺伝子を特異的に検出 同定する検査法を解説する 本法は 1 本の反応チューブ内で逆転写反応 遺伝子増幅を連続的に行い SFTS
NGS検査_SOP(案)v1
平成 29 年 2 月 6 日 次世代シークエンサー (Next-generation sequencing: NGS) 網羅的病原体検査法手順書 必要な試薬 DNA/RNA 精製キット ( 以下の DNA/RNA 精製試薬を推奨 ) q Roche MagNA Pure Compact Nucleic Acid Isolation Kit I 特徴 : 自動精製 キャリアー RNA 使用せず マグネットビーズ精製
