NGS検査_SOP(案)v1

Similar documents
16S (V3-V4) Metagenomic Library Construction Kit for NGS

cDNA cloning by PCR

組織からのゲノム DNA 抽出キット Tissue Genomic DNA Extraction Mini Kit 目次基本データ 3 キットの内容 3 重要事項 4 操作 4 サンプル別プロトコール 7 トラブルシューティング 9 * 本製品は研究用です *

培養細胞からの Total RNA 抽出の手順 接着細胞のプロトコル 1. プレート ( またはウエル ) より培地を除き PBSでの洗浄を行う 2. トリプシン処理を行い 全量を1.5ml 遠心チューブに移す スクレイパーを使って 細胞を掻き集める方法も有用です 3. 低速遠心 ( 例 300 g

ISOSPIN Blood & Plasma DNA

鳥インフルエンザA(H7N9)ウイルス検出マニュアル(第2版)公開用

Bacterial 16S rDNA PCR Kit

DNA/RNA調製法 実験ガイド

■リアルタイムPCR実践編

mRNA-Seq_SamplePrep.book

Microsoft Word - H30eqa麻疹風疹実施手順書(案)v13日付記載.docx

Bacterial 16S rDNA PCR Kit

ノーウオ―クウイルスのPCR法

無細胞タンパク質合成試薬キット Transdirect insect cell

PrimeScript RT reagent Kit (Perfect Real Time)

BKL Kit (Blunting Kination Ligation Kit)

QIAquick Spin プロトコールとトラブルシューティング ( /2008)

NGS_KAPA RNA HyperPrep Kit

Gen とるくん™(酵母用)High Recovery

DNA Fragmentation Kit

Protocol for CRISPR/Cas system in medaka ver Materials ベクター pcs2+hspcas9: Cas9 vector, Amp 耐性, [Addgene Plasmid 51815] pdr274: sgrna vector, K

17-05 THUNDERBIRD SYBR qpcr Mix (Code No. QPS-201, QPS-201T) TOYOBO CO., LTD. Life Science Department OSAKA JAPAN A4196K

遺伝子検査の基礎知識

コメDNA 抽出キット(精米、玄米1 粒スケール)

Troubleshooting Nextera Sample Preparation

PrimeScript® II 1st strand cDNA Synthesis Kit

PanaceaGel ゲル内細胞の観察 解析方法 1. ゲル内細胞の免疫染色 蛍光観察の方法 以下の 1-1, 1-2 に関して ゲルをスパーテルなどで取り出す際は 4% パラホルムアルデヒドで固定してから行うとゲルを比較的簡単に ( 壊さずに ) 取り出すことが可能です セルカルチャーインサートを

Chromatin Immunoprecipitation (ChIP)

EpiScope® ChIP Kit (anti-mouse IgG)

取扱説明書

手順 ) 1) プライマーの設計 発注変異導入部位がプライマーのほぼ中央になるようにする 可能であれば 制限酵素サイトができるようにすると確認が容易になる プライマーは 25-45mer で TM 値が 78 以上になるようにする Tm= (%GC)-675/N-%mismatch

Microsoft Word - NPK-801F取説(10-04) doc

ChIP Reagents マニュアル

Microsoft Word - FMB_Text(PCR) _ver3.doc

MLPA 法 Q&A 集

プロトコール集 ( 研究用試薬 ) < 目次 > 免疫組織染色手順 ( 前処理なし ) p2 免疫組織染色手順 ( マイクロウェーブ前処理 ) p3 免疫組織染色手順 ( オートクレーブ前処理 ) p4 免疫組織染色手順 ( トリプシン前処理 ) p5 免疫組織染色手順 ( ギ酸処理 ) p6 免疫

はじめてのリアルタイムPCR

Slide 1

AllPrep DNA/RNA Micro プロトコールとトラブルシューティング ( /2008)

Oligotex ™-dT30 <Super> mRNA Purification Kit (From total RNA)

AS LMD Sampling Manual

遺伝子検査の基礎知識

Microsoft Word - ケミストリープロトコル_v5_2012_Final.doc

Cytotoxicity LDH Assay Kit-WST

PrimeScript®One Step RT-PCR Kit Ver. 2

第 10 回シーケンス講習会 RNA-seq library 調製法の特徴と選び方 理化学研究所 (RIKEN) ライフサイエンス技術基盤研究センター (CLST) 機能性ゲノム解析部門 (DGT) ゲノムネットワーク解析支援施設 (GeNAS) 野間将平

PrimeScript® One Step RT-PCR Kit Ver. 2 (Dye Plus)

Microsoft Word - タンパク質溶液内酵素消化 Thermo

RNA-Seqをはじめよう ライブラリー調製編 絶対に失敗しないライブラリー調製

進化したNextera DNA Flex を用いたライブラリー調製

[PDF] GST融合タンパク質バッチ精製プロトコール

Slide 1

Microsoft PowerPoint _illumina_techsupport_session02_公開用_RevB [互換モード]

3'-Full RACE Core Set

150602_AN_SureSelect と KAPA Hyper Prep.indd

HB QIAamp Circulating Nucleic Acid (05/2014)

Fruit-mate™ for RNA Purification

Slide 1

RNA_Brochure_2012JPCS55_0913.indd

PG1571-PJT1690-COL02509-MP T2_J.indd

PAXgene Tissue DNA Kitプロトコールとトラブルシューティング( /2009)

5’-Full RACE Core Set

Microsoft PowerPoint - Final _LibraryQC_andTroubleshooting_August2013

MightyAmp™ DNA Polymerase Ver.3

マダニからの SFTS ウイルス検出マニュアル 衛生研究所配布用 ( 感染研獣医科学部 SOP ver3.1 互換 ) 作成 1 検査器具の確認商品名 メーカー 型番 特記事項 試薬 DEPC treated Water ( このプロトコールでは H2O または水と略す ) 開封時

DNA Ligation Kit <Mighty Mix>

スライド タイトルなし

プロトコル 蛍光色素を標識したい 利用製品 < 少量抗体 (10μg) 標識用 > ICG Labeling Kit- NH 2 [LK31] - アミノ基標識用 - R-Phycoerythrin Labeling Kit - NH 2 [LK23] Ab-10 Rapid Fluorescein

RNA_Brochure_2012JPCS55_0913.indd

Transcription:

平成 29 年 2 月 6 日 次世代シークエンサー (Next-generation sequencing: NGS) 網羅的病原体検査法手順書 必要な試薬 DNA/RNA 精製キット ( 以下の DNA/RNA 精製試薬を推奨 ) q Roche MagNA Pure Compact Nucleic Acid Isolation Kit I 特徴 : 自動精製 キャリアー RNA 使用せず マグネットビーズ精製 q MagNA Pure Bacteria Lysis Buffer 特徴 : 臨床検体中の細菌破砕に有効 q ZR BashingBead Lysis Tubes (0.1 & 0.5 mm) 特徴 : 臨床検体中の細菌破砕に有効 q Proteinase K Solution (WAKO 162-22751 : 20mg/ml) 特徴 : 4 保存可能な Proteinase K 溶液 q ボルテックスアダプター Vortex Adapter for Vortex Genie 24 tubes (1.5-2.0ml) (13000-V1-24) 特徴 : Vortex Genie に取り付け可能なアダプター 高額な破砕機を購入しなくてもビーズ破砕が可能 以下 その他キットいずれかでも対応可能 ( 若干の収量および品質に違いが見られる ) l QIAamp Viral RNA Mini Kit (QIAGEN) 特徴 : QIAcube 自動化可能 カラム精製 キャリアー RNA 添加 ( 以下の RNA-seq 用には無添加で精製を実施 ) l ZR Viral DNA/RNA Kit (Zymo Research) 特徴 : カラム精製 キャリアー RNA 無添加 RNA-Seq ライブラリー作成 q ScriptSeq v2 RNA-Seq Library Preparation kit (24 回 SSV21124; Illumina) 特徴 : 精製全 RNA を対象にランダム RNA-Seq ライブラリーを調整 Poly-A の無い RNA も対象にライブラリー化 q RNA-Seq Barcode Primers(Illumina-Compatible) (RSBC10948; Epicentre) 特徴 : 片方 (Single) のみ index 配列を付加 PCR enrichment (~x15 cycle) で Reverse primer の代わりに使用してインデックス配列を付加 1

q FailSafe PCR Enzyme Mix (FSE51100; Epicentre) 特徴 : ScriptSeq v2 用の PCR 酵素 q MinElute PCR purification kit (QIAGEN) 特徴 : PCR enrichment 用の template cdna の濃縮に使用 AMPpure XP ビーズでも代用可 q Qubit RNA Assay Kit 特徴 : RNA 定量 q Qubit dsdna Assay Kit 特徴 : ds-dna 定量 q アガロース電気泳動関連試薬と装置 ( 一般実験で使用している物品で可能 ) q GelRed Nucleic Acid Gel Stains 特徴 : 毒性の低いインターカレーター 予めアガロースゲルに混合した Prestain が可能 2

DNA/RNA 抽出 Roche MagNA Pure Compact Nucleic Acid Isolation Kit I により DNA/RNA 抽出 q 臨床検体 (200 µl) と MagNA Pure Bacteria Lysis Buffer (600 µl) を ZR BashingBead Lysis Tubes (0.1 & 0.5 mm) へ混合 q 20 mg/ml Proteinase K Solution を 10 µl 添加 q 軽くボルテックス q 55 C 20 分の加温 q Vortex adapter にチューブを設置し Max speed にて Vortex 10 分 q 10,000 rpm, 3 分の遠心 q 遠心上清 400 µl を Roche MagNA compact による自動抽出機により精製 q 50 µl の溶出液量を設定 自動抽出機により抽出 RNA 吸光度測定 Qubit RNA Assay Kit, 100 assays (Invitrogen) q RNA buffer 197μl q 色素 1μl q 抽出 RNA 2μl 200μl を混和し すぐに軽く 2-3 秒 vortex して 2 分間静置後を測定 3

Illumina MiSeq (HiSeq, NextSeq500 等 ) で解読可能な RNA-Seq 用ライブラリー作成 基本 ScriptSeq v2 RNA-Seq Library Preparation kit (Illumina) のプロトコールに準ずる https://www.illumina.com/products/scriptseq-rna-seq-library-prep.html cdna 合成 q Nuclease Free Water (9-X) μl q RNA(500pg-50ng) X μl (RNA が少ない場合は 9 μl) q RNA Fragment solution 1 μl q cdna Synthesis primer 2 μl 12 μl 65, 5 min 加温 (Thermal Cycler) * 保管状況等で臨床検体の傷みが激しい場合 85 C の熱処理ではさらに傷んでしまう ため 65 C 5min が適性です On ice( 急冷 ) ( 以下 別のチューブに用事調整 ) q cdna Synthesis Premix 3.0 μl q 100mM DTT 0.5 μl q StarScript Reverse Transcriptase 0.5 μl (premix と DTT を混ぜてから RTase を混合 ) cdna Synthesis Master Mix 4.0 μl q 12 μl に 4 μl を加える以下 PCR thermal cycler で反応 q 25 5 min, q 42 20 min q pause q Finishing Solution を 1 μl 加える ( ピペッティングで混ぜる ) q 37 10 min q 95 3 min q 25 までクールダウン 4

( 以下 別のチューブに用事調整 ) q Terminal Tagging Premix 7.5 μl ( 注意!: 粘稠性が高い ) q DNA Polymerase 0.5 μl Terminal Tagging Master Mix 8.0 μl q cdna 溶液 (16 μl) に用事調整した Terminal Tagging Master Mix 8 μl を加える q 25 15 min q 95 3 min インキュベーション q 4 までクールダウン (cdna の di-tag 化の完了 ) アダプター配列が連結した一本鎖 cdna ライブラリーの精製 MinElute PCR purification kit (QIAGEN) による cdna の精製 q 上記反応液に 5 倍容量の Buffer PBI を加えて混和する (24μl+120μl) q MinElute カラム (4 保存 ) にサンプルを MinElute カラムにアプライし 遠心 (13,000 rpm, 1 min) する q ろ液は棄てる 同じチューブの上に MinElute カラムを再度のせる q 洗浄のため 750 μl の Buffer PE を MinElute カラムに添加し 遠心 (13,000 rpm, 1 min) する q ろ液は棄て MinElute カラムを新しい 2 ml エッペンチューブに再度のせる その時 チューブを 180 回転させ 遠心壁を反転させる q 遠心 (13,000 rpm, 1 min) する q Micro tube 1.5ml DNA LowBind( 製品番号 : 72.706.700) マイクロ遠心チューブに MinElute カラムをのせる q cdna 溶出のため 25 μl の Buffer EB(10 mm Tris Cl ph 8.5) をカラムに添加する q 65 C, 5 min 加温 q 遠心 (13,000 rpm, 1 min) 回収する 5

アダプター配列が連結した RNA-Seq ライブラリーの PCR enrichment MiniElute kit で精製した cdna (di-tagged cdna) を template に index の付加および PCR enrichment を行う q di-tagged cdna 22.5 μl q FailSafe PCR Premix E 25 μl q Forward PCR primer 1 μl q Reverse PCR primer 1 μl ( もしくは Index primer) q FailSafe PCR Enzyme 0.5 μl Total 50 μl 95 30 sec 55 30 sec 15 cycle (15 cycle まで これ以上は PCR エラーの増産を伴う ) 68 3 min 68 7 min アガロース電気泳動による RNA-Seq ライブラリーの精度判定とサイズセレクション q PCR 産物 50 μl に 10 dye 5μl を加え 1% TAE アガロースゲル電気泳動 ( ゲル厚めに作成し あらかじめゲルレッドで染色しておく ) q 250-500 bp を切り取り ゲルは 2.0 ml チューブに回収し秤量する 6

Wizard SV Minicolumn (Promega) を用いたゲル精製 q Membrane binding solution を 1:1( ゲル 10mg に対して 10μl) で混ぜて 65 5-10 min q 各々の溶解したゲル片または PCR 反応に対して 1 本ずつ SV Column を Collection Tube に差し込んだもの (SV Minicolumn セット ) を準備する q 溶解したゲル片混合液 または PCR 産物調製液を SV Minicolumn セットに移し 室温で 1 分間インキュベートする q SV Minicolumn セットを微量遠心機で 16,000 g 1 分間遠心する q SV Minicolumn を SV Minicolumn セットから取り外し Collection Tube 中の液体を捨てる SV Minicolumn を Collection Tube に戻す q 700 μl の Membrane Wash Solution を加え カラムを洗浄する SV Minicolumn セットを 16,000 g 1 分間遠心する 前と同じように Collection Tube を空にし Collection Tube に SV Minicolumn を戻す q 400 µl の Membrane Wash Solution で洗浄を繰り返し SV Minicolumn セットを 16,000 g で 5 分間遠心する q カラムの底にフロースルーの液体がつかないように注意しながら SV Minicolumn セットを遠心機から取り出す フロースルーがカラムについてしまった場合は Collection Tube の中味を捨て SV Minicolumn セットを 1 分間再遠心する q SV Minicolumn を清浄な 1.5ml 微量遠心チューブに移す 50 μl の Nuclease-Free Water をピペットチップでメンブレンに触れないように注意しながら カラムの中心部に直接アプライする q 65 5 分間インキュベートする 16,000 g で 1 分間遠心する q SV Minicolumn を捨て 溶出した DNA が入った微量遠心チューブを 4 または-20 で保存する (-20 で保存可能 ) RNA-Seq ライブラリー DNA の定量 Qubit dsdna Assay Kit, 100 assays (Invitrogen) q RNAbuffer 197 μl q 色素 1 μl q DNA 2 μl 200μl を混和しすぐに vortex して測定 以降 Illumina sequencer に準じた手順にて配列解読を実施する 文責 : 国立感染症研究所 病原体ゲノム解析研究センター センター長 黒田誠 7

改訂履歴 平成 29 年 2 月 7 日 : NGS 検査法 SOP v1 作成 8