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9 株 ) ならびに標準株として C. parapsilosis(atcc90018) C. krusei(atcc6258) を用いた すべての臨床分離カンジダ株は 口腔内 爪 大腿から分離された すべてのカンジダ株は CHROMagar( 関東化学 ) と RapID Tm Yeast プラグシステム (REMEL Inc) によって菌種を同定した 2 薬剤感受性試験薬剤感受性試験は Clinical and Laboratory Standards Institute の M27-A2 標準法による微量液体希釈法にて行った (9) MCFG FLCZ AMPH-B の最小発育阻止濃度 (minimum inhibitory concentration: MIC) を測定した 3 感染実験 5 週齢の雌 BALB/c マウス ( 日本クレア株式会社 ) を用いた マウスの取り扱いについて American Association for Accreditation of Laboratory Animal Care criteria に基づいて行った (10) また 本研究は 長崎大学の動物実験倫理委員会の承認を得て行われた マウスは 200 mg/kg の cyclophosphamide(sigma-aldrich) と 250 mg/kg の酢酸コルチゾン (Sigma-Aldrich) を カンジダ感染の 2 日間前に腹腔内投与し さらに感染当日にも等量の免疫抑制剤を投与し免疫抑制状態にした 臨床分離 C. guilliermondii は 感染前日まで YPD 液体培地 (Becton Dickinson) で 30 一晩 振とう培養した 感染当日に 対数期の細胞を滅菌生理食塩水にて再懸濁 洗浄し 吸光度計にて 2 10 8 /ml に調整した マウスの尾静脈より本菌液の 0.2ml を経静脈的に接種した ( 最終接種菌量 : 4 10 7 / マウス ) MCFG による治療は MCFG を 2.5 mg/kg ならびに 25 mg/kg を感染当日の感染後 4 時間後 その後 1 回 /1 日 連日 7 日間 腹腔内投与した 対象として生理食塩水を腹腔内投与した マウスは 7 日間観察され 7 日目に屠殺した 屠殺後に 脾臓 腎臓 肝臓を無菌的に除去し 脾臓と腎臓は滅菌生理食塩水 1ml 中でホモジナイズした 肝臓は 滅菌生理食塩水 0.2 ml 中でホモジナイズした ホモジネート液の段階希釈液を作成し YPD 寒天培地 (Becton Dickinson) 上に塗布し 35 でインキュベート 各臓器におけるカンジダの菌数を計算した 感染実験は各治療群 10 匹ずつ使用し 1 回のみ行った 4 統計分析動物実験における各臓器の菌数について GraphPad Prism バージョン 5.0( グラフパッドソフトウェア社 ) を用いて行った P<0.05 を統計学的に有意差があるとした 結果 : 1カンジダ属の薬剤感受性試験結果表 1 に結果を示す MCFG の MIC は C. albicans で最も低く C. guilliermondii は最も高かった FLCZ について C. guilliermondii は C. albicans や C. parapsilosis に比較して高い MIC 値を示した AMPH-B に対する感受性は 3 菌種で差は認められず感受性を示した 2 感染実験と MCFG の有効性臨床分離 C. guilliermondii の各臓器からの検出菌数を 図 1( 脾臓 ) 図 2( 腎臓 ) 図 3( 肝臓 ) に示す 高用量 MCFG 治療群では 脾臓を除いて腎臓 肝臓において菌数を有意に減少させた 考察 : 本研究では 中国吉林省の臨床分離カンジダ 34 株について FLCZ AMPH-B MCFG に対する薬剤感受性を検討し 特に C. guilliermondii についてマウスにおける MCFG の有用性を検討した 薬剤感受性の結果は 欧米から報告されている種々の報告と比較して大きな差は認められなかった (11,12) 今回の検討では カンジダの分離株としては比較的少ない C. guilliermondii が多く認められたが いずれも FLCZ の MIC 値は高値であり この点についても既存の報告と大差はなかった (2,13) MCFG について 今回検討した 3 菌種では C. guilliermondii が最も高い MIC 値を示した 一方 Canton らは 10% 不活化ウシ胎児血清の存在下で C. guilliermondii19 株に対する MCFG とカスポファンギン (CAS) の感受性を報告しており MCFG はウシ胎児血清存在下で感受性が非存在下よりも 3 倍程度向上したと報告している 一方 CAS にはそのような効果は認められず 同じキャンディ -98-

ン系抗真菌薬でも差があることを示している (14) また 他の報告でも 同様に 血清存在下における MCFG の感受性向上が報告されている (8) 一方 C. guilliermondii 感染症に対する MCFG の効果を in vivo で検討した報告は少ない 今回の我々の検討では MCFG は 2.5mg/kg の低用量では 肝臓 脾臓 腎臓における菌数の減少が認められなかったが 25mg/kg の高用量群では 脾臓を除いて 有意に菌数の減少を認め C. guilliermondii 感染症における MCFG の有効性を示すことができた なお MCFG の高用量群にて 脾臓における菌数の減少傾向は認められたが有意差は認められなかった この点については 理由は不明であり今後の検討が待たれる 参考文献 : 1. Pfaller MA, Diekema DJ. Rare and emerging opportunistic fungal pathogens: concern for resistance beyond Candida albicans and Aspergillus fumigatus. J Clin Microbiol. 2004 Oct;42(10):4419-31. 2.Savini V, Catavitello C, Di Marzio I, Masciarelli G, Astolfi D, Balbinot A, Bianco A, Pompilio A, Di Bonaventura G, D'Amario C, D'Antonio D. Pan-azole-resistant Candida guilliermondii from a leukemia patient's silent funguria. Mycopathologia. 2010 Jun;169(6):457-9. Epub 2010 Feb 5. 3. Ghannoum MA, Hajjeh RA, Scher R, Konnikov N, Gupta AK, Summerbell R, Sullivan S, Daniel R, Krusinski P, Fleckman P, Rich P, Odom R, Aly R, Pariser D, Zaiac M, Rebell G, Lesher J, Gerlach B, Ponce-De-Leon GF, Ghannoum A, Warner J, Isham N, Elewski B. A large-scale North American study of fungal isolates from nails: the frequency of onychomycosis, fungal distribution, and antifungal susceptibility patterns.j Am Acad Dermatol. 2000 Oct;43(4):641-8. 4.Pfaller MA, Diekema DJ, Mendez M, Kibbler C, Erzsebet P, Chang SC, Gibbs DL, Newell VA. Candida guilliermondii, an opportunistic fungal pathogen with decreased susceptibility to fluconazole: geographic and temporal trends from the ARTEMIS DISK antifungal surveillance program. J Clin Microbiol. 2006 Oct;44(10):3551-6. 5. Ostrosky-Zeichner L, Rex JH, Pappas PG, Hamill RJ, Larsen RA, Horowitz HW, Powderly WG, Hyslop N, Kauffman CA, Cleary J, Mangino JE, Lee J. Antifungal susceptibility survey of 2,000 bloodstream Candida isolates in the United States. Antimicrob Agents Chemother. 2003 Oct;47(10):3149-54. 6. Pfaller MA, Boyken L, Hollis RJ, Messer SA, Tendolkar S, Diekema DJ. In vitro susceptibilities of Candida spp. to caspofungin: four years of global surveillance. J Clin Microbiol. 2006 Mar;44(3):760-3. 7.Masala L, Luzzati R, Maccacaro L, Antozzi L, Concia E, Fontana R. Nosocomial cluster of Candida guillermondii fungemia in surgical patients. Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 2003 Nov;22(11):686-8. 8.Saribas Z, Yurdakul P, Cetin-Hazirolan G, Arikan-Akdagli S. Influence of serum on in vitro susceptibility testing of echinocandins for Candida parapsilosis and Candida guilliermondii. Mycoses. 2012 Mar;55(2):156-60. 9. National Committee for Clinical Laboratory Standards. 2002. Reference method for broth microdilution antifungal susceptibility testing of yeast, 2nd ed. Approved standard M27-A2. National Committee for Clinical Laboratory Standards, Wayne, PA. 10. Committee on the Care and Use of Laboratory Animals of the Institute of Laboratory Animal Resources, Commission of Life Sciences, National Research Council. 1996. Guide for the care and use of laboratory animals. National Academy Press, Washington, D.C. 11.Axner-Elings M, Botero-Kleiven S, Jensen RH, Arendrup MC. Echinocandin susceptibility testing of Candida isolates collected during a 1-year period in Sweden. J Clin Microbiol. 2011 Jul;49(7):2516-21. 12.Graybill JR, Bocanegra R, Luther M, Fothergill A, Rinaldi MJ. Treatment of murine Candida krusei or Candida glabrata infection with L-743,872. Antimicrob Agents Chemother. 1997 Sep;41(9):1937-9. -99-

13. Lockhart SR, Messer SA, Pfaller MA, Diekema DJ. Identification and Susceptibility Profile of Candida fermentati from a worldwide collection of Candida guilliermondii clinical isolates. J Clin Microbiol. 2009 Jan;47(1):242-4. 14. Cantón E, Pemán J, Sastre M, Romero M, Espinel-Ingroff A. Killing kinetics of caspofungin, micafungin, and amphotericin B against Candida guilliermondii. Antimicrob Agents Chemother. 2006 Aug;50(8):2829-3 表 1. 中国吉林省にて分離されたカンジダ属の薬剤感受性試験結果 Candida Geometric mean MIC (range) (μg/ml)obtained by: Species No MCFG FLCZ AMPH-B C. albicans C. guilliermondii C. parapsilosis 17 8 9 0.07(0.03-0.5) 0.44(0.25-0.5) 0.37(0.06-1) 1.21(0.125-16) 13.5(4-32) 1.39(0.5-2) 0.63(0.25-1) 0.56(0.5-1) 0.67(0.25-1) 図の説明図 1. 播種性 C. guilliermondii 感染マウスモデルにおける MCFG の効果 ( 脾臓における菌数 ) 各ドットは各マウス. から分離された C. guilliermondii の菌数を示している MFG 2.5 は MCFG 2.5mg/kg/ 日投与群 MFG25 は MCFG 25mg/kg/ 日投与群を示す 脾臓から分離された C. guilliermondii の菌数は 生理食塩水投与群 MCFG 投与群において有意差を認めなかった 図 2. 播種性 C. guilliermondii 感染マウスモデルにおける MCFG の効果 ( 腎臓における菌数 ) 各ドットは各マウスから分離された C. guilliermondii の菌数を示している MFG 2.5 は MCFG 2.5mg/kg/ 日投与群 MFG25 は MCFG 25mg/kg/ 日投与群を示す 腎臓から分離された C. guilliermondii の菌数は 生理食塩水投与群 MCFG 低容量群では有意差を認めなかったが MCFG 高用量群では有意に減少した 図 3. 播種性 C. guilliermondii 感染マウスモデルにおける MCFG の効果 ( 肝臓における菌数 ) 各ドットは各マウスから分離された C. guilliermondii の菌数を示している MFG 2.5 は MCFG 2.5mg/kg/ 日投与群 MFG25 は MCFG 25mg/kg/ 日投与群を示す 肝臓から分離された C. guilliermondii の菌数は 生理食塩水投与群 MCFG 低容量群では有意差を認めなかったが MCFG 高用量群では有意に減少した -100-

図 1. 播種性 C. guilliermondii 感染マウスモデルにおける MCFG の効果 ( 脾臓における菌数 ) 図 2. 播種性 C. guilliermondii 感染マウスモデルにおける MCFG の効果 ( 腎臓における菌数 ) 図 3. 播種性 C. guilliermondii 感染マウスモデルにおける MCFG の効果 ( 肝臓における菌数 ) 作成日 :2012 年 2 月 25 日 -101-