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Transcription:

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はじめに 免疫組織化学 (IHC) が広く普及し,FISH (Fluorescence In Situ Hybridization) 法などの分子病理学的な技術も応用されるようになり, 近年, 実際の病理診断へ用いられるようになってきた. これらは通常, 組織切片が対象であるが, これまで我々は,IHC 法をはじめてする様々な技術を細胞標本に応用してきた. 本発表では, 分子病理技術のエタノール固定標本, LBC 標本,Pap 標本など, 細胞標本への応用について概説する.

分子病理技術 FISH 法 Fluorescence in situ hybridization DuoCISH 法 Dual color chromogenic in situ hybridization DISH 法 Dual color in situ hybridization PCR 法 Polymerase Chain Reaction

乳癌における細胞標本を用いた HER2-FISH 遺伝子増幅の検出

HER2 FISH 増幅 CEP17 HER2 非増幅 組織標本細胞標本

組織標本と細胞標本の HER2/CEP17 比較 症例 HercepTest 組織標本細胞標本 症例 HercepTest 組織標本細胞標本 1 3+ 5.89 3.55 19 2+ 1.17 1.01 2 3+ 3.38 4.47 20 2+ 1.59 1.11 3 3+ 3.55 2.56 21 2+ 1.61 1.20 4 3+ 7.07 5.97 22 2+ 1.29 1.19 5 3+ 2.70 2.22 23 2+ 1.87 1.26 6 2+ 11.02 6.38 24 1+ 1.11 1.11 7 2+ 1.15 1.07 25 1+ 1.30 1.22 8 2+ 1.56 1.49 26 1+ 1.26 1.04 9 2+ 1.23 1.08 27 1+ 1.24 1.03 10 2+ 1.17 1.24 28 1+ 1.14 1.18 11 2+ 1.27 1.12 29 1+ 1.85 1.23 12 2+ 1.33 1.13 30 0 1.07 1.02 13 2+ 1.53 1.14 31 0 1.19 1.08 14 2+ 1.18 1.14 32 0 1.40 1.37 15 2+ 1.33 1.28 16 2+ 1.30 1.32 HER2 / CEP17 > 2.2: 増幅 17 2+ 1.63 1.37 1.8 HER2 / CEP17 2.2: equivocal 18 2+ 1.16 1.26 HER2 / CEP17 < 1.8: 非増幅

HER2/CEP17 の比較

CEP17 シグナル数の比較

細胞標本を用いた FISH 組織標本ではCEP17( セントロメア ) は核膜近傍 ( ヘテロクロマチンが多い領域 ) に位置するため, 薄切によって失われやすく, 細胞標本を用いたFISH 法は, 正確な HER2/CEP17 判定に有用である. HER2 / CEP17 組織標本 > 細胞標本 CEP17 HER2 組織標本 HER2/CEP17 ratio = 1.75 細胞標本 HER2/CEP17 ratio = 1.16 Itoh H, et al: Lower HER-2/chromosome enumeration probe 17 ratio in cytologic HER-2 fluorescence in situ hybridization for breast cancers: three-dimensional analysis of intranuclear localization of centromere 17 and HER-2 signals. Cancer. 2008; 114: 134 140.

分子病理技術 FISH 法 Fluorescence in situ hybridization DuoCISH 法 Dual color chromogenic in situ hybridization DISH 法 Dual color in situ hybridization PCR 法 Polymerase Chain Reaction

DuoCISH Scoring Denaturation & Hybridization FISH posthybridization CISH steps FISH Scoring

DuoCISH HER2 増幅症例 CEN17 HER2 アルコール固定標本

DuoCISH HER2 非増幅症例 塗抹標本に比べ,LBC は集塊傾向があり, 細胞 ( 核 ) も小型のため, 核個々の認識 ( 境界 ) が判別し難い CEN17 HER2 LBC HER2 / CEN17: 1.06

DuoCISH HER2 非増幅症例 CEN17 HER2 Pap 標本は不安定であり, 反応が弱い場合や検出できない場合も多い. Pap 標本

DISH HER2( 非増幅症例 ) CEN17 LBC HER2

FISH 肺腺癌における転座 逆位 EML4-ALK break apart probe FISH EML4-ALK (Pap 標本 ) Negative Positive

細胞標本の EML4-ALK 免疫染色 iaep 法 (intercalated antibody-enhanced polymer)

intercalated antibody iaep 法 抗原 一次抗体 二次抗体ペルオキシダーゼポリマー

FL (G1-2) における染色体異常 IgH/bcl2 t(14;18) 転座 Duo CISH 法 IGH-BCL2 break apart probe LBC FISH に比べ, シグナルの判別が難しい ( 転座の判定 )

細胞標本を用いた場合の特徴 1. 真のシグナル数が得られる. ポリソミーの判定に有用. 2. 染色性 : アルコール固定標本 LBC>>> 既 Pap 標本. 既 Pap 標本は不安定 3. LBCは集塊傾向があり, 細胞が小型であるため, 細胞個々が判定し難い. 4. 集塊状の場合, シグナルが観察し難い. 大型では内部はほとんど反応なし ( 特に HER2) 5. 細胞の同定, 浸潤部の判定などが難しい. 6. 立体的なためシグナルのフォーカスが異なり, カウントしにくい.

分子病理技術 FISH 法 Fluorescence in situ hybridization DuoCISH 法 Dual color chromogenic in situ hybridization DISH 法 Dual color in situ hybridization PCR 法 Polymerase Chain Reaction

肺腺癌の細胞診検体を用いた 全自動 SNPs 測定装置 i-densy による EGFR 変異検出

全自動 SNPs 測定装置 i-densy (Arkray)

i-densy の操作 24

測定原理 1.PCR により DNA を増幅増幅領域を短く設計し 短時間で処理が可能 通常の PCR 90~120 分 約 60 分 2. 増幅後に蛍光消光プローブ (Quenching Probe: Q-Probe) と PCR 増幅産物を結合させ 野生型配列と変異型配列の解離温度 (Tm 値 ) の違いを利用し変異を検出 (Tm 解析法 )

DNA の結合の強さ 検出 検出 C G F C G F A G C G C G C G A T A T C 間違った結合ミスマッチ 結合力弱 G 正しい結合パーフェクトマッチ G 結合力強 低温度高

蛍光変化量の微分値 SNP Typing 結果 200 150 mismatch perfect match 100 50 hetero 0-50 40 45 50 55 60 65 温度 ( )

EGFR 変異が陽性 ( サイクリーブ法 ) の肺腺癌 12 症例を用いて検討 LBC 検体 ( 肺胞 気管支洗浄液 ) 1. 洗浄液沈査をCytoLyt 処理, 遠沈 (2 回 ). 2. 沈査をPreservCytに入れる (15 分以上 ). 3. 遠沈後, 沈査を2 回水洗. 4. 20μlの沈査をi-densyへ.

症例 1 LBC Exon 21 L858R: Negative Exon19 del: Positive 症例 1 Pap 標本 Exon 21 L858R: Negative Exon19 del: Positive

癌細胞を確認 Papanicolaou 標本 カバーガラスを外す キシレン アルコール 水洗 1h カミソリで細胞を削ぎ落とす 水分とともに細胞を回収 マイクロチューブに入れ遠心

症例 2 Micropapillary type LBC Exon 21 L858R: Positive Exon19 del: Negative

症例 2 Micropapillary type Pap 標本 Exon 21 L858R: Positive Exon19 del: Negative

結果 i-densy サイクリーブ法 症例 LBC Pap 洗浄液 1 Ex 19 deletion Ex 19 deletion Ex 19 deletion 2 Ex 21 L858R Ex 21 L858R Ex 21 L858R 3 Ex 19 deletion Ex 19 deletion Ex 19 deletion 4 Ex 19 deletion Ex 19 deletion Ex 19 deletion 5 Ex 19 deletion Ex 19 deletion 6 Ex 21 L858R 組織切片 Ex 21 L858R Ex 21 L858R 7 Ex 21 L858R Ex 21 L858R 8 Ex 21 L858R Ex 21 L858R 9 Ex 19 deletion Ex 19 deletion 10 Ex 19 deletion 11 Ex 21 L858R 12 Ex 19 deletion Ex 19 deletion

症例 6 Pap 標本 Exon 21 L858R: Positive Exon19 del: Negative 症例 6 組織切片 Exon 21 L858R: positive Exon19 del: negative

結果 LBC4/4およびPap 標本 4/4でサイクリーブ法と一致した. Pap 標本のみ8 症例 1 例は色素が残存で測定不可 1 例は細胞過少 組織切片でも抽出操作なく検出可能であった (1 例 ).

まとめ 細胞の欠損のない細胞標本では, 真のシグナル数が得られるため, 正確な遺伝子検索に有用であると考えられた. FISH, DuoCISH,DISH 法は, すべてLBC 標本へ応用可能であり,Pap 標本よりも染色性が優れており,LBCの有用性が確認された. i-densyは, 簡便, 短時間で,EGFRの変異を検出でき, 特に病院病理における遺伝子解析に至適であると考えられた.

第 26 回日本臨床細胞学会関東連合会学術集会 COI disclosure 筆頭演者氏名 : 伊藤仁今回の演題に関して開示すべきCOIはありません.