目次 血球細胞の培養... 4 (1)Non-T Cell 用単核球培養培地の調製... 4 (2) 新鮮単核球を受け入れる場合... 5 (3) 凍結単核球を受け入れる場合... 5 ips 細胞の樹立 : 遺伝子導入 培地交換... 6 (1) 遺伝子導入試薬の準備 (pcxle セット )..
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- あきひろ よせ
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1 プロトコール フィーダーフリーでのヒト ips 細胞の樹立 維持培養 1
2 目次 血球細胞の培養... 4 (1)Non-T Cell 用単核球培養培地の調製... 4 (2) 新鮮単核球を受け入れる場合... 5 (3) 凍結単核球を受け入れる場合... 5 ips 細胞の樹立 : 遺伝子導入 培地交換... 6 (1) 遺伝子導入試薬の準備 (pcxle セット )... 6 (2) 遺伝子導入試薬の準備 (pce セット )... 7 (3) プレートのコーティング... 7 (4) 遺伝子導入... 7 (5) 培地添加... 8 (6) 培地交換... 8 コロニーピックアップ... 9 (1) 培地の準備... 9 (2) プレートのコーティング... 9 (3) コロニーピックアップ... 9 ips 細胞の継代 (6-well から 6-well へ ) (1) 培地の準備 (2) プレートのコーティング (3) 継代 (4) 細胞継代後の培地交換 ips 細胞の凍結 凍結ストックの解凍 (1) 培地の準備 (2) プレートのコーティング (3) 融解 (4) 細胞融解後の培地交換 融解後 1 日目
3 On-feeder ips 細胞を feeder-free 条件にて継代する方法 (1) 培地の準備 (2) プレートのコーティング (3) 継代 (6-well から 6-well の場合 ) 参考資料 (1) 維持培養培地 StemFit の調製 (2)0.5X TrypLE Select 溶液の調製 (3) 培養スケールに応じた試薬量一覧 (4)iPS 細胞の樹立 :CytoTune-iPS( センダイウイルス ) を使った遺伝子導入
4 血球細胞の培養 準備するもの 細胞 : 末梢血または臍帯血由来単核球細胞 (1.2 x 10^7 cells) 試薬 : StemFit without C 培地 * (C 液を含まない StemFit 培地 味の素 ) IL-6(20 µg 和光純薬) SCF(10 µg 和光純薬) TPO(10 µg 和光純薬) Flt-3L(10 µg 和光純薬) IL-3(10 µg 和光純薬) G-CSF(10 µg 和光純薬) カウンテス自動セルカンター付属トリパンブルー溶液 ( ライフテクノロジーズ T10282) 物品 : 24-well プレート 15/50 ml コニカルチューブピペットカウンテス自動セルカンター ( ライフテクノロジーズ C10227) カウンテス自動セルカンター付属スライド ( ライフテクノロジーズ C10228) 手順 (1)Non-T cell 用単核球培養培地の調製 1. StemFit without C 培地に以下の最終濃度になるようにサイトカインを加えよく混ぜる IL-6:50 ng/ml SCF:50 ng/ml TPO:10 ng/ml Flt-3L:20 ng/ml IL-3:20 ng/ml G-CSF:10 ng/ml * 単核球培養培地として StemFit without C 培地の代わりに以下の培地を使うことも可能である StemSpan-ACF (STEMCELL Technologies ST-09805/09855) X-VIVO 10 (Lonza Q) 4
5 (2) 新鮮単核球を受け入れる場合 1. 単核球培養培地を調製する ml チューブなどに入った分離調製済み新鮮単核球を受け入れる x g 18 C 10 min で遠心する ( 停止時の設定 :slow) 4. 遠心終了後チューブを回収し上清を取り除く 5. ペレットをタッピングで崩し 4 ml の単核球培養培地を加え そのままピペッティング (6 回 ) で懸濁する well plate の中央の 4 wells に 1 ml ずつ分注する 7. 使わない well には蒸留水または PBS(-) を 1 ml ずつ入れて蒸発を防止する 8. インキュベーター (37 C CO2 5%) で7 日間培養する (3) 凍結単核球を受け入れる場合 1. 単核球培養培地を調製する 2. StemFit without C 培地を室温に戻しておく ml チューブ用アルミブロックをセットした恒温槽 ( ウォーターバスでも可 ) の電源を入れて 37 C に温めておく 4. 新しい 15 ml チューブに 10 ml の StemFit without C 培地を入れておく 5. 凍結単核球の入ったチューブを恒温槽にて少し氷の塊が残る程度まで溶かす 6. 溶けたストック溶液を StemFit without C 培地の入った 15 ml チューブに移しよく混ぜる 7. 細胞懸濁液の一部をトリパンブルー染色し Countess で生細胞数をカウントする 8. 新しい 15 ml チューブに 1.2 x 10^7 cells を含む懸濁液を移す x g 18 C 10 min で遠心する ( 停止時の設定 :slow) 10. 遠心終了後チューブを回収し上清を取り除く 11. ペレットをタッピングで崩し 4 ml の単核球培養培地を加え そのままピペッティング (6 回 ) で懸濁する well plate の中央の 4 wells に 1 ml ずつ分注する 13. 使わない well には蒸留水または PBS(-) を 1 ml ずつ入れ蒸発を防止する 14. インキュベーター (37 C CO2 5%) で7 日間培養する 5
6 ips 細胞の樹立 : 遺伝子導入 培地交換 準備するもの 細胞 : 培養した血球細胞試薬 : エピソーマルプラスミドセット (pcxle セットまたは pce セット ) P3 Primary Cell 4D-Nucleofector X Kit L( キュベット P3 溶液 サプリメント溶液含む Lonza V4XP-3012) 単核球培養培地 (StemFit without C+サイトカイン ) imatrix-511(laminin-511 E8)( ニッピ /892002) 維持培養培地 StemFit( 味の素 ) カウンテス自動セルカンター付属トリパンブルー溶液 ( ライフテクノロジーズ T10282) 物品 : 6-well プレート 15/50 ml コニカルチューブセルスクレーパーピペットカウンテス自動セルカンター ( ライフテクノロジーズ C10227) カウンテス自動セルカンター付属スライド ( ライフテクノロジーズ C10228) Nucleofector 4D Core unit(lonza AAF-1001B) Nucleofector 4D X unit(lonza AAF-1001X) 手順 (1) 遺伝子導入試薬の準備 (pcxle セット ) 1. プラスミド溶液 (pcxle-hoct3/4-shp53-f pcxle-hsk pcxle-hul pcxwb-ebna1) を以下のように混合する pcxle-hoct3/4-shp53-f (1 mg/ml) 2.76 µl pcxle-hsk (1 mg/ml) 2.76 µl pcxle-hul (1 mg/ml) 2.76 µl pcxwb-ebna1 (1 mg/ml) 1.72 µl 2. 以下のように遺伝子導入試薬を調製する P3 溶液 164 µl サプリメント溶液 36 µl pcxle プラスミド溶液 10 µl 6
7 (2) 遺伝子導入試薬の準備 (pce セット ) 3. プラスミド溶液 (pce-hoct3/4 pce-mp53dd pce-hsk pce-hul pcxb-ebna1) を以下のように混合する pce-hoct3/4 (1 mg/ml) 2.1 µl pce-mp53dd (1 mg/ml) 2.1 µl pce-hsk (1 mg/ml) 2.1 µl pce-hul (1 mg/ml) 2.1 µl pcxb-ebna1 (1 mg/ml) 1.6 µl 4. 以下のように遺伝子導入試薬を調製する P3 溶液 164 µl サプリメント溶液 36 µl pcxle プラスミド溶液 10 µl (3) プレートのコーティング 1. 6-well プレートに PBS (-) を 1.5 ml/well 入れる 2. Laminin-511 E8( コート量 :0.5 µg/cm^2) を 4.8 µg/well 加えすぐによく混ぜる C CO2 5% インキュベーターで 60 min 以上反応させる min 後インキュベーターから取り出す 5. StemFit without C 培地を 0.75 ml/well ずつ加え良くなじませる 6. 上清を除去する 7. 単核球培養培地を 1.5 ml/well 加えインキュベーターに入れておく (4) 遺伝子導入 1. 1 ml の単核球培養培地を 1.5 ml チューブに分注しインキュベーター (37 C CO2 5%) に入れて加温しておく 2. Nucleofector 4D の電源を ON にし セルフチェックが異常なく完了したことを確認する 3. X ユニットを選択し 100 µl キュベットでの遺伝子導入モードを選択する 4. 2つの 100 µl キュベットの遺伝子導入プログラムを EO-117 に設定する 5. 単核球を増殖培養させたプレートをインキュベーターから取り出す 6. すべての well の細胞を1 本の 15 ml チューブに回収する 7. 細胞懸濁液をトリパンブルー染色し Countess で生細胞数をカウントする 8. 2 本の新しい 15 ml チューブを準備し 2.5 x 10^6 cells の生細胞をそれぞれのチューブに取り分ける x g 18 C 10 min で遠心する 7
8 10. 遠心中にラミニンコーティングプレートと加温してあった単核球増殖培養用培地をインキュベーターから取り出す 11. 遠心終了後チューブを回収しすべてのチューブの上清をできる限り取り除く 12. ペレットをタッピングで崩し 15 ml チューブ 1 本当り手順 1または2で調製した遺伝子導入試薬 100 µl で細胞を懸濁し 専用キュベットに空気が入らないように入れる 13. もう 1 本の 15 ml チューブも同様の作業を行う 14. 2つのキュベットを Nucleofector 4D にセットし プログラムをスタートさせる 15. Nucleofector 4D による遺伝子導入に問題がなかったこと ( 緑色の十字マークの点灯 ) を確認後 キュベットを回収し 加温してあった単核球培養培地 450 µl をそれぞれのキュベットに加える ( 赤い横線の点灯のエラーが出た場合はエラー番号を確認する ) 16. 2つのキュベットに入っている遺伝子導入後の細胞を専用のスポイトで回収し 1 本の 1.5 ml チューブに回収する 17. 細胞懸濁液を 35 µl ずつ各 well に添加する 18. 細胞が均一になるようにプレートを揺らしインキュベーターに入れて培養を開始する (5) 培地添加 1. 遺伝子導入した細胞を播種後 3,5,7 日目に各 well に 1 ml の StemFit を加える (6) 培地交換 1. 遺伝子導入した細胞を播種後 9 日目に各 well あたり 2 ml の StemFit で培地交換を行う 2. 以降 2 日おきに培地交換を行い ips 細胞のコロニーが 1 mm を超える程度まで続ける 8
9 コロニーピックアップ 準備するもの 細胞 : 誘導した ips 細胞コロニー試薬 : imatrix-511(laminin-511 E8)( ニッピ /892002) 10 mm Y-27632( 和光純薬工業 ) PBS (-)( ナカライテスク ) TrypLE Select( ライフテクノロジーズ A ) 維持培養培地 StemFit( 味の素 ) T10282) 物品 : 12-well プレート 15/50 ml コニカルチューブピペット 手順 (1) 培地の準備必要量の維持培養培地に培地の 1/1000 量の 10 mm Y を加えてよく混合しておく ( 最終濃度 10 µm)(=stemfit+y) (2) プレートのコーティング well プレートに PBS (-) を 0.6 ml/well 入れる 2. Laminin-511 E8( コート量 :0.5 µg/cm^2) を 1.9 µg/well 加えすぐによく混ぜる C CO2 5% インキュベーターで 60 min 以上反応させる min 後インキュベーターから取り出す 5. 維持培養培地を 0.3 ml/well ずつ加え良くなじませる 6. 上清を除去する 7. 維持培養培地 (StemFit+Y) を 0.6 ml/well 加えインキュベーターに入れておく (3) コロニーピックアップ 1. カメラ付き実体顕微鏡システムなどコロニーピックアップに使う機器を準備する 2. コロニーを拾う well の培地を新しい培地に交換する 3. モニタでコロニーを見ながら P10 ピペットマン (10 µl チップ 目盛りを 10 µl に合わせておく ) でコロニーをピックアップし 96-well プレートに入れる 4. 手順 3 を繰り返し 個のコロニーをピックアップする 5. コロニーの入った各 well に 10 µl の TrypLE Select を加える 9
10 6. インキュベーター (37 C CO2 5%) に入れて 10 分間反応させる ( 開始から 分過ぎた時にプレートを軽く振って溶液中のコロニーを動かす ) 7. インキュベーターから取り出し それぞれの well に 180 µl の StemFit+Y 培地を加える 8. 各 well のコロニーを P200 ピペットマン ( 目盛りを 180 µl に合わせておく ) で強めに 10 回ピペッティングしてバラバラにする 9. 1 本のチューブ内のすべての細胞懸濁液をラミニンコーティングした 12-well plate の 1 well に播種する 10. 細胞が均一になるように速やかにプレートを揺らす 11. すべてのコロニーについて手順 9 10 を行う 12. インキュベーター (37 C CO2 5%) に入れて培養する * コロニーの周辺部や中心部が分化している場合は取り除いてから未分化状態と思われ る部分をピックアップする 10
11 ips 細胞の継代 (6-well から 6-well へ ) 準備するもの 細胞 : 80% コンフルエントのヒト ips 細胞試薬 : imatrix-511(laminin-511 E8)( ニッピ /892002) 10 mm Y-27632( 和光純薬工業 ) PBS (-)( ナカライテスク ) 0.5X TrypLE Select( ライフテクノロジーズ A )(0.5 mm EDTA/PBS で 1/2 希釈 最終濃度 0.75 mm EDTA 参考資料あり) 維持培養培地 StemFit( 味の素 ) カウンテス自動セルカンター付属トリパンブルー溶液 ( ライフテクノロジーズ T10282) 物品 : 6-well プレート 15/50 ml コニカルチューブセルスクレーパーピペットカウンテス自動セルカンター ( ライフテクノロジーズ C10227) カウンテス自動セルカンター付属スライド ( ライフテクノロジーズ C10228) 手順 (1) 培地の準備必要量の維持培養培地に培地の 1/1000 量の 10 mm Y を加えてよく混合しておく ( 最終濃度 10 µm)(=stemfit+y) (2) プレートのコーティング 1. 6-well プレートに PBS (-) を 1.5 ml/well 入れる 2. Laminin-511 E8( コート量 :0.5 µg/cm^2) を 4.8 µg/well 加えすぐによく混ぜる C CO2 5% インキュベーターで 60 min 以上反応させる min 後インキュベーターから取り出す 5. 維持培養培地を 0.75 ml/well ずつ加え良くなじませる 6. 上清を除去する 7. StemFit+Y 培地を 1.5 ml/well 加えインキュベーターに入れておく (3) 継代 1. 位相差顕微鏡で細胞を観察し 写真撮影を行い継代に使用する ( 死細胞が多く細胞が観 察しにくい場合には 新しい培地に交換して写真撮影を行う PBS では細胞が剥がれる 11
12 可能性があるので培地の方が好ましい ) 2. 培地を除去する 3. PBS 1 ml を加えて洗浄し PBS を除去する X TrypLE Select を 300 µl/well ずつ加えよくなじませる C CO2 5% インキュベーターで 1 min 反応させる 6. 1 min 後インキュベーターから取り出し 再び well 全体によく行き渡らせる C CO2 5% インキュベーターでさらに 3 min 反応させる ((3)-5 でインキュベーターに入れてから合計 4 min) 8. インキュベーターから取り出し顕微鏡で細胞の様子を観察する ( 細胞間接着が破壊され細胞 1 個 1 個が丸くなっている様子を確認する 4 min の処理時間では細胞基質間接着は剥がれないため plate に接着したままである 写真の通り ) X TrypLE Select を除去する ml/well の PBS(-) で洗浄し PBS(-) を除去する ( 細胞が剥がれやすいので静かに加える ) 11. 維持培養培地を 1 ml/well 加える 12. セルスクレーパーで細胞を剥がす 13. 位相差顕微鏡で細胞が剥がれているか確認する 回ピペッティングを行い新しいチューブに回収する ( 培地を加えて総量を 1.5 ml にする ( 総量は適宜変更可能 ))* ピペッティングが弱すぎるとシングルセルになりきらない場合もあるので注意 強めでも問題ないが チップなどの先端を plate の底面に押し付けないようにする 15. トリパンブルー染色を行いカウンテス自動セルカンターにてセルカウントを行う ( カウンテスの設定 :Sensitivity: 5, Min size: 8, Max size: 30, Circularity: 75) ,000 個の生細胞を laminin コーティングした 6-well プレート 1 well に播種する ( 細胞の接着が非常に強いので播種後すぐにプレート等を揺らし均一に広げる ) C CO2 5% インキュベーターで培養する 18. 翌日 Y の入っていない維持培養培地に交換する * 培地交換は継代翌日 その後 1 日おきに行い 継代後 7 8 日目頃から毎日交換する ( 培 地の色が 1 日でオレンジ 黄色に変わってきたり 死細胞が増えてきたら毎日交換する ようにする ) 細胞の継代は 8 日 ±1 日をメドに行う 12
13 (4) 細胞継代後の培地交換 準備するもの 細胞 : 細胞を播種した 6-well plate 試薬 : 維持培養培地 StemFit( 味の素 ) 物品 : ピペット 手順 1. 培地を室温に戻しておく 2. 位相差顕微鏡で観察し 写真を撮る 3. 培養培地を除去する 4. 維持培養培地を 1.5 ml/well 加える C CO2 5% インキュベーターで培養する * 培地交換は継代翌日 その後 1 日おきに行い 継代後 7 8 日目頃から毎日交換する ( 培 地の色が 1 日でオレンジ 黄色に変わってきたり 死細胞が増えてきたら毎日交換する ようにする ) 13
14 ips 細胞の凍結 準備するもの 細胞 : 80% コンフルエントのヒト ips 細胞試薬 : STEM-CELLBANKER( 日本全薬工業 CB041/043) PBS(-)( ナカライテスク ) 維持培養培地 StemFit( 味の素 ) 0.5X TrypLE Select (0.5 mm EDTA/PBS(-) 最終濃度 0.75 mm) カウンテス自動セルカンター付属トリパンブルー溶液 ( ライフテクノロジーズ T10282) 物品 : クライオチューブ (2.0 ml) セルスクレーパーピペットカウンテス自動セルカンター ( ライフテクノロジーズ C10227) カウンテス自動セルカンター付属スライド ( ライフテクノロジーズ C10228) プログラムフリーザー PDF-150/250( ストレックス )( バイセル ( 日本フリーザー BICELL) ミスターフロスティ( サーモ ) でも可 ) 手順 (6-well の場合 ) 1. 位相差顕微鏡で細胞を観察し写真撮影を行う ( 死細胞が多く細胞が観察しにくい場合には 新しい培地に交換して写真撮影を行う PBS(-) では細胞が剥がれる可能性があるので培地の方が好ましい ) 2. 培地を除去する 3. PBS(-) 1 ml を加えて洗浄し PBS(-) を除去する X TrypLE Select を 300 µl/well ずつ加えよくなじませる C CO2 5% インキュベーターで 1 min 反応させる 6. 1 min 後インキュベーターから取り出し 再び well 全体によく行き渡らせる C CO2 5% インキュベーターでさらに 3 min 反応させる ( 合計 4 min) 8. インキュベーターから取り出し顕微鏡で細胞の様子を観察する X TrypLE Select を除去する ml/well の PBS(-) で wash する 11. 維持培養培地を 1 ml/well 加える 12. セルスクレーパーで細胞を剥がす 13. 位相差顕微鏡で細胞が剥がれているか確認する 回ピペッティングを行う 15. トリパンブルー染色を行いカウンテス自動セルカンターにてセルカウントを行う 14
15 (Sensitivity: 5, Min size: 8, Max size: 30, Circularity: 75) 16. 必要細胞懸濁液量 ( ロスが多いため作製ストック数 +α 分の細胞をチューブに分注してその後の操作を行う ) をチューブに移し 800 rpm, 22 C, 5 min 遠心を行う 17. 上清を除き ペレットをタッピングで崩す x 10^6 cells/ml となるように STEM-CELLBANKER で懸濁する µl (=2 x 10^5 cells) を 1 本のクライオチューブに分注する 20. プログラムフリーザー (-1 C/min) にて凍結を行う ( またはバイセルなどに入れて-80 C 3 時間以上 ) 21. 数日中に液体窒素に移して保存する 15
16 凍結ストックの解凍 準備するもの 細胞 : ips 細胞の凍結バイアル試薬 : imatrix-511(laminin-511 E8)( ニッピ /892002) 10 mm Y-27632( 和光純薬工業 ) PBS (-)( ナカライテスク ) 維持培養培地 StemFit( 味の素 ) カウンテス自動セルカンター付属トリパンブルー溶液 ( ライフテクノロジーズ T10282) 物品 : 6-well プレート 15/50 ml コニカルチューブピペットカウンテス自動セルカンター ( ライフテクノロジーズ C10227) カウンテス自動セルカンター付属スライド ( ライフテクノロジーズ C10228) 手順 (1) 培地の準備必要量の維持培養培地に培地の 1/1000 量の 10 mm Y を加えておく ( 最終濃度 10 µm) (2) プレートのコーティング 1. 6-well プレートに PBS(-) を 1.5 ml/well 入れる 2. imatrix-511( コート量 :0.5 µg/cm^2) を 4.8 µg/well 加えすぐによく混ぜる C CO2 5% インキュベーターで 60 min 以上反応させる min 後インキュベーターから取り出す 5. 維持培養培地を 0.75 ml/well 加え培地を良くなじませる 6. 上清を除去する 7. 維持培養培地 (Y 入り ) を 1.5 ml/well 加えインキュベーターに入れておく (3) 融解 1. ウォーターバスを 37 C に温めておき 培地を室温に戻しておく 2. 15/50 ml コニカルチューブに 5 ml の維持培養培地を入れる 3. 液体窒素タンクから ips 細胞の凍結バイアルを取り出し ウォーターバスで素早く解凍する ( 細胞の塊が少し残っている程度の状態で ) 16
17 4. ステップ 3 の細胞懸濁液を 15/50 ml コニカルチューブに移す ( ピペッティングは1, 2 回程度 ) rpm(160 x g) 22 C 5 min で遠心する 6. 上清を取り除く 7. ペレットをタッピングで崩し 0.5 ml の維持培養培地を加える 8. トリパンブルー染色を行いカウンテス自動セルカンターにてセルカウントを行う (Sensitivity: 5, Min size: 8, Max size: 30, Circularity: 75) 9. Laminin コーティングした 6-well プレート1well に 65,000 個の生細胞を播種する 10. 細胞が均一になるようにプレートを揺らす ( 細胞の接着が非常に強いので播種後すぐにプレート等を揺らし均一に広げる ) C CO2 5% インキュベーターで培養する 12. 翌日 Y を加えていない維持培養培地に交換する * 培地交換は融解翌日 その後 1 日おきに行う ( 交換翌日の培地の色がオレンジ 黄色に なり死細胞が増えてきたら毎日交換するようにする ) 17
18 (4) 細胞融解後の培地交換 融解後 1 日目 * 培地から Y を除くため翌日に必ず培地交換を行う 準備するもの 細胞 : 細胞を播種した 6-well plate 試薬 : 維持培養培地 StemFit( 味の素 ) 物品 : ピペット 手順 1. 培地を室温に戻しておく 2. 位相差顕微鏡で観察し 写真を撮る 3. 培養培地を除去する 4. 維持培養培地を 1.5 ml/well 加える C CO2 5% インキュベーターで培養する * 培地交換は融解翌日 その後 1 日おきに行う ( 培地の色が 1 日でオレンジ 黄色に変 わってきたり 死細胞が増えてきたら毎日交換するようにする ) 18
19 On-feeder ips 細胞を feeder-free 条件にて継代する方法 準備するもの 細胞 : 80% コンフルエントの on-feeder ヒト ips 細胞試薬 : imatrix-511(laminin-511 E8)( ニッピ /892002) 10 mm Y-27632( 和光純薬工業 ) PBS (-)( ナカライテスク ) 0.5X TrypLE Select( ライフテクノロジーズ A )(0.5 mm EDTA/PBS で 1/2 希釈 最終濃度 0.75 mm EDTA) CTK 溶液維持培養培地 StemFit( 味の素 ) カウンテス自動セルカンター付属トリパンブルー溶液 ( ライフテクノロジーズ T10282) 物品 : 6-well プレート 15/50 ml コニカルチューブセルスクレーパーピペットカウンテス自動セルカンター ( ライフテクノロジーズ C10227) カウンテス自動セルカンター付属スライド ( ライフテクノロジーズ C10228) 手順 (1) 培地の準備必要量の維持培養培地に培地の 1/1000 量の 10 mm Y を加えてよく混合しておく ( 最終濃度 10 µm) (2) プレートのコーティング 1. 6-well プレートに PBS (-) を 1.5 ml/well 入れる 2. Laminin-511 E8( コート量 :0.5 µg/cm^2) を 4.8 µg/well 加えすぐによく混ぜる C CO2 5% インキュベーターで 60 min 以上反応させる min 後インキュベーターから取り出す 5. 持培養用培地を 0.75 ml/well ずつ加え良くなじませる 6. 上清を除去する 7. 維持培養培地 (Y 入り ) を 1.5 ml/well 加えインキュベーターに入れておく 19
20 (3) 継代 (6-well から 6-well の場合 ) 1. 位相差顕微鏡で細胞を観察し 写真撮影を行い継代に使用する ( 死細胞が多く細胞が観察しにくい場合には 新しい培地に交換して写真撮影を行う ただし PBS では細胞が剥がれる可能性があるので培地の方が好ましい ) 2. 培地を除去する 3. PBS 1 ml を加えて洗浄し PBS を除去する 4. CTK 溶液を 600 µl/well ずつ加えよくなじませる 5. 室温で 1-2 min 反応させ feeder 細胞を plate から剥がす 6. PBS 1 ml を加えて洗浄し PBS を除去する X TrypLE Select を 300 µl/well ずつ加えよくなじませる C CO2 5% インキュベーターでさらに 1 min 反応させる 9. Plate を揺すって 0.5X TrypLE Select を well 全体に行き渡らせる C CO2 5% インキュベーターでさらに反応させる ( 合計 4 min) 11. インキュベーターから取り出し顕微鏡で細胞の様子を観察する ( 細胞間接着が破壊され細胞 1 個 1 個が丸くなっている様子を確認する 4 min の処理時間では細胞基質間接着は剥がれないため plate に接着したままである 下の写真の通り ) X TrypLE Select を除去する ( この時点で細胞が剥がれていることが多いのでその場合は 22 に進む ) ml/well の PBS(-) で洗浄し PBS(-) を除去する ( 細胞が剥がれやすいので静かに加える ) 14. 維持培養培地を 1 ml/well 加える 15. セルスクレーパーで細胞を剥がす 16. 位相差顕微鏡で細胞が剥がれているか確認する 回ピペッティングを行い新しいチューブに回収する ( 培地を加えて総量を 1.5 ml にする ( 総量は適宜変更可能 )) 18. トリパンブルー染色を行いカウンテス自動セルカンターにてセルカウントを行う (Sensitivity: 5, Min size: 8, Max size: 30, Circularity: 75) ,000 個の生細胞を laminin コーティングした 6-well プレート 1 well に播種する ( 細 20
21 胞の接着が非常に強いので播種後すぐにプレート等を揺らし均一に広げる ) C CO2 5% インキュベーターで培養する 21. 翌日 Y の入っていない維持培養培地に交換する 途中で細胞が剥がれてしまった場合の続き(12 より ) 22. StemFit を 700 µl 加え ( 合計 1000 µl) ピペッティングを 10 回行い細胞をバラバラにする rpm(160 x g) 22 C 5 min で遠心し 上清を除去してペレットをタッピングで崩す 24. 維持培養培地を 1 ml/well 加え 6 回ピペッティングを行い細胞をバラバラにする 25. トリパンブルー染色を行いカウンテス自動セルカンターにてセルカウントを行う (Sensitivity: 5, Min size: 8, Max size: 30, Circularity: 75) ,000 個の生細胞を laminin コーティングした 6-well プレート 1 well に播種する ( 細胞の接着が非常に強いので播種後すぐにプレート等を揺らし均一に広げる ) C CO2 5% インキュベーターで培養する 28. 翌日 Y の入っていない維持培養培地に交換する * * 培地交換は継代翌日 その後 1 日おきに行い 継代後 7 8 日目頃から毎日交換する ( 培地の色が1 日でオレンジ 黄色に変わってきたり 死細胞が増えてきたら毎日交換するようにする ) 細胞の継代は8 日 ±1 日をメドに行う 21
22 参考資料 (1) 維持培養培地 StemFit の調製 準備するもの 試薬 : StemFit 用 A 液 400 ml(4 C 保管 ) StemFit 用 B 液 100 ml(-30 C 保管 ) StemFit 用 C 液 2 ml(-30 C 保管 ) 物品 : ピペット 手順 1. B 液と C 液を 4 C または室温で溶解する (8 時間以上 o/n) 2. 溶解した B 液 100 ml を A 液に添加する 3. 溶解した C 液 2 ml を A 液に添加する 4. 蓋をしっかりと閉めてよく混ぜる ml チューブに 45 ml ずつ分注する C フリーザーで保管する * StemFit without C 培地の作製には手順 3を飛ばす * 使用期限は-80 C で6ヶ月 4 C 保管で 2 週間とする * 分注量は適宜変更可能 * 使用時は室温か 4 C で溶かす (37 C での加温は行わない ) 22
23 (2)0.5X TrypLE Select 溶液の調製 準備するもの 試薬 : TrypLE Select( ライフテクノロジーズ A ) 0.5 M EDTA 溶液 ( ナカライテスク ) PBS (-)( ナカライテスク ) 物品 : ピペット 250 ml フィルターシステム (0.2 um filter) 手順 1. PBS(-) 250 ml をフィルターシステムに分取する µl の 0.5 M EDTA 溶液を加える 3. バキュームを引き吸引ろ過滅菌を行う (=0.5 mm EDTA/PBS(-) 溶液 ) ml チューブに 7 ml の 0.5 mm EDTA/PBS(-) を分取する 5. 同じチューブに 7 ml の TrypLE Select を分取する 6. 蓋を閉めてよく混ぜる * 使用期限は室温保管で 4 週間とする 23
24 (3) 培養スケールに応じた試薬量一覧 ラミニンコーティング 12-well 6-well 60-mm 100-mm cm µg コーティング濃度 :0.5 µg/cm 2 複数 well/dish をまとめてコーティングする場合はマスターミックスとしてまとめてラミニ ン溶液を調整し それを分注することも可能 0.5X TrypLE Select 12-well 6-well 60-mm 100-mm ,800 µl ipscs の播種細胞数 12-well 6-well 60-mm 100-mm - 13,000 29,000 80,000 cells 培地量 12-well 6-well 60-mm 100-mm ml 24
25 (4)iPS 細胞の樹立 :CytoTune-iPS( センダイウイルス ) を使った遺伝子導入 準備するもの 細胞 : 培養した血球細胞 (1 x 10^5 cells) 試薬 : CytoTune-iPS 2.0( 国内 ;MBL DV-0304A ( アカデミア ), DV-0304 ( 営利機関 1) 海外; ライフテクノロジーズ A16517) 単核球培養培地 (StemFit without C+サイトカイン ) imatrix-511(laminin-511 E8)( ニッピ /892002) StemFit( 味の素 ) カウンテス自動セルカンター付属トリパンブルー溶液 ( ライフテクノロジーズ T10282) 物品 : 24-well プレート 6-well プレート 15/50 ml コニカルチューブセルスクレーパーピペットカウンテス自動セルカンター ( ライフテクノロジーズ C10227) カウンテス自動セルカンター付属スライド ( ライフテクノロジーズ C10228) 手順 (1) 遺伝子導入試薬の準備 1. センダイウイルス溶液 (CytoTune 2.0 KOS CytoTune 2.0 hc-myc CytoTune 2.0 hklf4) を以下のように混合する CytoTune 2.0 KOS MOI=5 CytoTune 2.0 hc-myc MOI=5 CytoTune 2.0 hklf4 MOI=5 Ø 総容量を単核球培養培地で 1 ml に合わせる (2) 遺伝子導入 1. 単核球を増殖培養させたプレートをインキュベーターから取り出す 2. すべての well の細胞を1 本の 15 ml チューブに回収する 3. 細胞懸濁液をトリパンブルー染色し Countess で生細胞数をカウントする x 10^5 cells の生細胞をチューブに取り分ける x g 18 C 10 min で遠心する 6. 遠心終了後チューブを回収しすべてのチューブの上清を限り取り除く 7. ペレットをタッピングで崩し 準備しておいた遺伝子導入試薬 1 ml で再懸濁する 25
26 8. 24-well plate の中央の well に移し入れる 9. 使わない well には蒸留水を 1 ml ずつ入れて蒸発を防止する 10. インキュベーター (37 C CO2 5%) で 24 時間培養する (3) プレートのコーティング ( 遺伝子導入の翌日 ) 1. 6-well プレートに PBS (-) を 1.5 ml/well 入れる 2. Laminin-511 E8( コート量 :0.5 µg/cm^2) を 4.8 µg/well 加えすぐによく混ぜる C CO2 5% インキュベーターで 60 min 以上反応させる min 後インキュベーターから取り出す 5. StemFit without C 培地を 0.75 ml/well ずつ加え良くなじませる 6. 上清を除去する 7. 単核球培養培地を 1.5 ml/well 加えインキュベーターに入れておく (4) 遺伝子導入した細胞のプレーティング 1. 遺伝子導入した細胞の入ったプレートをインキュベーターから取り出し 細胞をチューブに回収する 2. 細胞懸濁液を 35 µl ずつ各 well に添加する 3. 細胞が均一になるようにプレートを揺らしインキュベーターに入れて培養を開始する * 以降の培地添加 培地交換 コロニーピックアップなどの操作はプラスミドを用いた場 合と同じ 26
27 その他情報 : 作成 : 京都大学 ips 細胞研究所初期化機構研究部門 講師中川誠人 ([email protected]) 参考文献 : A novel efficient feeder-free culture system for the derivation of human induced pluripotent stem cells M. Nakagawa et al., Scientific Reports, 4:3594 (2014) DOI: /srep03594 An Efficient Non-viral Method to Generate Integration-Free Human ips Cells from Cord Blood and Peripheral Blood Cells K. Okita et al., Stem Cells, 31(3): (2013) DOI: /stem
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1. ゲル内細胞の免疫染色 蛍光観察の方法 以下の 1-1, 1-2 に関して ゲルをスパーテルなどで取り出す際は 4% パラホルムアルデヒドで固定してから行うとゲルを比較的簡単に ( 壊さずに ) 取り出すことが可能です セルカルチャーインサートを用いた培養ではインサート底面をメス等で切り取ることで またウェルプレートを用いた培養ではピペットの水流でゲル ( 固定後 ) を底面から浮かすことで 回収しやすくなります
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PureExo Exosome Isolation Kit for cell culture media & serum 高純度エクソソームを高収率 迅速に単離 エクソソームは 細胞由来の直径 nm の細胞外小胞で 広範囲の生体液 ( 血液 尿 羊水 細胞培養培地など ) に存在していま
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6) 複合培養系を用いた腸管上皮細胞機能評価系 ( 炎症性腸疾患 ) 東京大学大学院農学生命科学研究科薩秀夫, 石本容子 はじめに炎症性腸疾患 (Inflammatory bowel disease; IBD) は潰瘍性大腸炎及びクローン病に代表される消化器疾患であり, 近年その患者数が急激に増加している. また炎症性腸疾患はやはり増加の一途を辿る大腸癌のリスクファクターでもあり, 従って炎症性腸疾患の予防
Microsoft Word - タンパク質溶液内酵素消化 Thermo
タンパク質の溶液内酵素溶液内酵素消化 ( 質量分析用サンプル調製 ) 質量分析計によるタンパク質解析においては 一般的にタンパク質を還元 アルキル化した後にトリプシン等で酵素消化して得られた消化ペプチドサンプルが用いられます 本資料ではこのサンプル調製について 専用キットを用いて行う方法 各種試薬や酵素を用いて行う方法 また関連情報として タンパク質の定量法についてご紹介しています 内容 1 培養細胞の酵素消化
Bacterial 16S rDNA PCR Kit
研究用 Bacterial 16S rdna PCR Kit 説明書 v201307da 微生物の同定は 形態的特徴 生理 生化学的性状 化学分類学的性状などを利用して行われますが これらの方法では同定までに時間を要します また 同定が困難な場合や正しい結果が得られない場合もあります 近年 微生物同定にも分子生物学を利用した方法が採用されるようになり 微生物の持つ DNA を対象として解析を行う方法が活用されています
【Webinar】顕微鏡観察だけでなく、定量的解析から見える事
顕微鏡観察だけでなく 定量的解析から見える事 ~ ハイコンテントアナリシスのメリット ~ サーモフィッシャーサイエンティフィックライフテクノロジーズジャパン株式会社テクニカルサポート小林英夫 The world leader in serving science 1 顕微鏡観察時に苦労していることはありませんか? 観察前の操作 細胞の状態 染色方法 観察時 観察後の操作 撮影した画像をどのように解釈すべきか
第13回文科大臣賞幹細胞選考資料
製品開発の例 別紙 3 連携機関 大阪大学 株式会社ニッピ 京都大学 味の素株式会社 功労者候補者 大阪大学蛋白質研究所教授関口清俊 株式会社ニッピバイオマトリックス研究所長服部俊治 京都大学 ips 細胞研究所講師中川誠人 事例の概要 大阪大学の関口教授は多能性幹細胞の足場となるタンパク質 ( ラミニン 511) を同定し このタンパク質の活性を保持した断片の組換えタンパク質の開発に成功 これがヒト
スライド 1
新技術で分離した ヒト骨質由来微小幹細胞の医療応用 薗田精昭 関西医科大学大学院医学研究科先端医療学専攻修復医療応用系幹細胞生物学 2001 背景 (1): 微小幹細胞とは Journal of Cellular Biochemistry 80;455-460(2001) 微小幹細胞に関する最初の報告生体の組織内に非常に小さな spore-like stem cell が存在することが初めて報告された
プロトコル 蛍光色素を標識したい 利用製品 < 少量抗体 (10μg) 標識用 > ICG Labeling Kit- NH 2 [LK31] - アミノ基標識用 - R-Phycoerythrin Labeling Kit - NH 2 [LK23] Ab-10 Rapid Fluorescein
蛍光色素を標識したい 利用製品 < 少量抗体 (0μg) 標識用 > ICG Labeling Kit- H [LK] - アミノ基標識用 - R-Phycoerythrin Labeling Kit - H [LK] Ab-0 Rapid Labeling Kit [LK] Allophycocyanin Labeling Kit- H [LK] Ab-0 Rapid HiLyte Fluor TM
研究目的 1. 電波ばく露による免疫細胞への影響に関する研究 我々の体には 恒常性を保つために 生体内に侵入した異物を生体外に排除する 免疫と呼ばれる防御システムが存在する 免疫力の低下は感染を引き起こしやすくなり 健康を損ないやすくなる そこで 2 10W/kgのSARで電波ばく露を行い 免疫細胞
資料 - 生電 6-3 免疫細胞及び神経膠細胞を対象としたマイクロ波照射影響に関する実験評価 京都大学首都大学東京 宮越順二 成田英二郎 櫻井智徳多氣昌生 鈴木敏久 日 : 平成 23 年 7 月 22 日 ( 金 ) 場所 : 総務省第 1 特別会議室 研究目的 1. 電波ばく露による免疫細胞への影響に関する研究 我々の体には 恒常性を保つために 生体内に侵入した異物を生体外に排除する 免疫と呼ばれる防御システムが存在する
:59:20 Cell Counting TC20 全自動セルカウンター 809b 再 校 松本 K CMYK
2018.09.07 09:59:20 Cell Counting TC20 全自動セルカウンター 809b 再 校 松本 K CMYK 革新的なオートフォーカス技術と洗練された細胞計数アルゴリズムにより TC20 全自動セルカウンターは主観性を排除した信頼性の高い細胞カウントを約 30 秒で提供します 株化細胞や初代培養細胞など哺乳類細胞で正確にカウントできます サンプル中に複数の細胞種が混在する場合は
1. 測定原理 弱酸性溶液中で 遊離塩素はジエチル p フェニレンジアミンと反応して赤紫色の色素を形成し これを光学的に測定します 本法は EPA330.5 および US Standard Methods 4500-Cl₂ G EN ISO7393 に準拠しています 2. アプリケーション サンプル
00595 塩素 (DPD 法 ) 遊離塩素の測定 測定範囲 : 0.03~6.00mg/l Cl 2 結果は mmol/l 単位でも表示できます 2. ピペットで 5.0ml の試料を丸セルに取ります 3. 青のミクロスプーンで 1 回分の試薬 Cl 1 を加えて ねじぶたで閉じます 4. セルをよく振とうして 固体物を溶かします 5. 反応時間 :1 分間 6. 各セルをセルコンパートメントにセットし
遺伝子検査の基礎知識
リアルタイム PCR( インターカレーター法 ) 実験ガイドこの文書では インターカレーター法 (TB Green 検出 ) によるリアルタイム PCR について 蛍光検出の原理や実験操作の流れなどを解説します 実際の実験操作の詳細については 各製品の取扱説明書をご参照ください - 目次 - 1 蛍光検出の原理 2 実験に必要なもの 3 実験操作法 4 結果の解析 1 1 蛍光検出の原理 インターカレーターによる蛍光検出の原理
日本標準商品分類番号 カリジノゲナーゼの血管新生抑制作用 カリジノゲナーゼは強力な血管拡張物質であるキニンを遊離することにより 高血圧や末梢循環障害の治療に広く用いられてきた 最近では 糖尿病モデルラットにおいて増加する眼内液中 VEGF 濃度を低下させることにより 血管透過性を抑制す
日本標準商品分類番号 872491 カリジノゲナーゼの血管新生抑制作用 カリジノゲナーゼは強力な血管拡張物質であるキニンを遊離することにより 高血圧や末梢循環障害の治療に広く用いられてきた 最近では 糖尿病モデルラットにおいて増加する眼内液中 VEGF 濃度を低下させることにより 血管透過性を抑制することが示されたが 血管新生に対するカリジノゲナーゼの影響を評価した報告はない そこで今回 網膜血管新生に対するカリジノゲナーゼの役割を同定するため
cDNA cloning by PCR
cdna cloning/subcloning by PCR 1. 概要 2014. 4 ver.1 by A. Goto & K. Takeda 一般的に 細胞または組織由来の RNA から作製した cdna(cdna pool) から 特定の cdna をベクターに組み込む操作を cdna cloning と呼ぶ その際 制限酵素認識配列を付与したオリゴ DNA primer を用いた PCR
土壌溶出量試験(簡易分析)
土壌中の重金属等の 簡易 迅速分析法 標準作業手順書 * 技術名 : 吸光光度法による重金属等のオンサイト 簡易分析法 ( 超音波による前処理 ) 使用可能な分析項目 : 溶出量 : 六価クロム ふっ素 ほう素 含有量 : 六価クロム ふっ素 ほう素 実証試験者 : * 本手順書は実証試験者が作成したものである なお 使用可能な技術及び分析項目等の記載部分を抜粋して掲載した 1. 適用範囲この標準作業手順書は
マイクロボリュームエアクーリング (MVAC) 法によるブタ胚 ( 体内生産胚 ) のガラス化保存方法 - 1 -
マイクロボリュームエアクーリング (MVAC) 法によるブタ胚 ( 体内生産胚 ) のガラス化保存方法 - 1 - 胚の採取 MVAC 法でガラス化するのに適している胚の発育ステージは胚盤胞 ~ 拡張胚盤胞である ( 図 1) このステージであれば加温後に高い生存性が得られている そのため これらの発育ステージの胚を効率的に採取するため 供胚豚は発情誘起処理後に胚を採取する方が望ましい 性成熟豚の発情誘起で確実性の高い人工流産法での発情誘起処理開始から採胚までのタイムスケジュールを下記に示したので参考にしてください
Oligotex ™-dT30 <Super> mRNA Purification Kit (From total RNA)
研究用 Oligotex -dt30 mrna Purification Kit (From total RNA) 説明書 v201706 Oligotex-dT30 は 培養細胞や動植物組織などの total RNA から polya + RNA を高純度に分離 精製するために JSR ライフサイエンス社およびロシュ ダイアグノスティックス株式会社が共同開発した mrna
