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1 遺伝子多型を検出する電気泳動法 - 亜鉛サイクレンを用いたポリアクリルアミド電気泳動法 (PAGE) ヒトゲノム計画が完了した現在 生命活動においてゲノム情報がどのように利用されているのか を解析すること ゲノミクス が これからの課題となっています ヒトゲノムの塩基配列が決定 されても 大多数の遺伝子産物についての機能は分かっておらず また機能の分かっているもので も それらの発現調節機構の詳細は依然不明のままです ゲノムミクスにおいて最も重要なことの 一つは 疾患発症に関連する遺伝子の解析です ヒトの遺伝子の塩基配列には多型とよばれる個人 差 が あ り 特 に 1 個 の 塩 基 が 他 の 塩 基 に 置 換 し た 一 塩 基 多 型 SNP single nucleotide polymorphism は 1000 塩基対に 1 ヵ所の高頻度で存在します SNP と特定の疾患が関連す る場合 SNP はその疾患のマーカーとして利用できます したがって SNP の研究成果は 疾患 の診断や予測や ゲノム創薬やオーダーメード医療へと発展することが期待されます しかし そ れを実現するためには より高精度で かつ 簡便 迅速 低コストに解析できる SNP 検出法の 開発が急務です 私たちの研究室では チミン塩基に優先的に結合し DNA中のチミン塩基にも結合する亜鉛サ イクレン Zn 1,4,7,10-tetraazacyclododecane Zn cyclen を用いたポリアクリルアミ ド電気泳動法 亜鉛サイクレン PAGE というSNP検出法を開発しています このプロトコル で紹介する亜鉛サイクレン PAGEには 以下のような長所があります 実験操作は一般的なポリアクリルアミド電気泳動法と同じです 特別な装置や高価な蛍光プローブは不要です ミニゲル1枚につき約1ドルの亜鉛サイクレンをゲル内に添加するだけで分析ができます 放射性同位元素は使用しません 一般的なDNAのゲル蛍光染色で検出できます 電気泳動による分離操作を利用しているので 非特異的PCR産物が混ざったサンプルも 分析できます ヘテロ接合体の検出や遺伝子変異動物の遺伝子検査にも利用できます 参考文献 1. A novel procedure for simple and efficient genotyping of single nucleotide polymorphisms by using the Zn2+-cyclen complex. Nucleic Acids Research, 30, e126 (2002), Emiko Kinoshita-Kikuta, Eiji Kinoshita, and Tohru Koike 2. Reliable and cost-effective screening of inherited heterozygosity by using Zn2+ cyclen polyacrylamide gel electrophoresis. Clinical Chemistry, 51, (2005), Eiji Kinoshita, Emiko Kinoshita-Kikuta, Hirokazu Kojima, Yoko Nakano, Kazuaki Chayama, and Tohru Koike 3. Non-SCN5A related Brugada syndromes: Verification of normal splicing and trafficking of SCN5A without exonic mutations. Annals of Human Genetics, 71, 8-17 (2007), Yukiko Nakano, Satoshi Tashiro, Eiji Kinoshita, Emiko Kinoshita Kikuta, Sou Takenaka, Miwa Miyoshi, Hiroshi Ogi, Eichiro Sakada, Tomokazu Okimoto, Yukoh Hirai, Noboru Oda, Fumiharu Miura, Kazuko Yamaoka, Tohru Koike, and Kazuaki Chayama

2 使用する トリスヒドロキシメチルアミノメタン Tris グリシン 塩酸 アクリルアミド N, N メチレンビスアクリルアミド 過硫酸アンモニウム SYBR Green I TEMED テトラメチルエチレンジアミン EDTA 2Na グリセロール 硝酸亜鉛 六水和物 BPB ブロムフェノールブルー KOD Plus- DNA ポリメラーゼ 東洋紡株式会社 亜鉛サイクレン硝酸塩 受託合成品 株式会社ナード研究所 すべてのは電気泳動用または特級が望ましい 使用する機器など 電気泳動装置 ATTO AE-6500 型 ラピダス ミニスラブ 電気泳動電源 ATTO AE-8130 型 マイパワー500 ゲル撮影装置 ATTO AE-6920V-FX デンシトグラフ 容量可変ピペット 10μℓ 200μℓ 1000μℓ 5000μℓ 電子天秤 スターラー ph メーター ピペットチップ メスシリンダー スパーテル 遠心チューブ シリンジ 保存用ビン ポリプロピレン製タッパー ゲル染色用 使用する溶液 A液 30%(w/v) アクリルアミド水溶液 冷暗所保存 アクリルアミド 29.7 g N, N メチレンビスアクリルアミド 0.3 g 100 にメスアップ 適量 B 液 30%(w/v) アクリルアミド水溶液 冷暗所保存 アクリルアミド 29.0 g N, N メチレンビスアクリルアミド 1.0 g 100 にメスアップ 適量 C 液 1.5 M Tris-HCl 緩衝液 ph Tris 18.2 g 80 6 M 塩酸 ph 8.8 に調整 適量 100 にメスアップ 適量

3

4 SYBR Green I 染色液 使用直前に調整 10 SYBR Green I 1μℓ ゲルサイズに合ったポリプロピレン製タッパーに入れる 分離ゲル 濃縮ゲルを採用しない場合 電気泳動実験 A 用 8.0 A 液 5.67 C 液 2.13 E 液 85μℓ 500μℓ TEMED 15μℓ G 液 100μℓ A 液 C 液 E 液 蒸留水 TEMED を遠心チューブに加え よく混合する ゲル作成直前に G 液を混合した後 ゲル溶液をガラスプレートの間へ注入する トラブルシューティング1参照 分離ゲル溶液 濃縮ゲルを採用する場合 電気泳動実験 B 用 6.5 A 液 4.33 C 液 1.63 E 液 65μℓ 370μℓ TEMED 15μℓ G 液 90μℓ A 液 C 液 E 液 蒸留水 TEMED を遠心チューブに加え よく混合する ゲル作成直前に G 液を混合した後 ゲル溶液をガラスプレートの間へ注入する 濃縮ゲル溶液 電気泳動実験 B 用 2 B 液 300μℓ D 液 500μℓ 1.15 TEMED 10μℓ G 液 40μℓ B 液 D 液 蒸留水 TEMED を遠心チューブに加え よく混合する ゲル作成直前に G 液を混合した後 ゲル溶液をガラスプレートの間へ注入する

5 泳動用サンプルの調整 実施例 A ラット骨格筋電位依存性 Na チャネル遺伝子 rscn4a の PCR 産物 bp 野生型 DNA 断片 PCR 産物 と一塩基変異を導入した 8 種類の変異型 DNA 断片 PCR 産物 を TA クローニングベクターに挿入し それらを鋳型 DNA とする PCR 条件 5μℓ 鋳型 DNA 0.4 ng/μℓ 0.5μℓ 0.2 ng フォワードプライマー 10μM 0.2μℓ 0.2μM リバースプライマー 10μM 0.2μℓ 0.2μM dntps 各 2 mm 0.5μℓ 各 0.2 mm μℓ buffer for KOD Plus- 25 mm 硫酸マグネシウム水溶液 0.2μℓ 1.0 mm 3.1μℓ KOD Plus- DNA ポリメラーゼ 0.1μℓ 0.1 unit ヘテロサンプルは 野生型と変異型の 2 種鋳型 DNA を 1 : 1 混合して PCR を行う 95 3 分間の後 秒 秒 秒 を 35 サイクル 電気泳動実験 A で泳動を行った アプライ量は 0.5μℓ/well 実施例 B Brugada 症候群患者 10 人の心室筋由来電位依存性 Na チャネル遺伝子 hscn5a の エクソン 21 領域を含む PCR 産物 100 bp 各患者の白血球より単離精製したゲノム を鋳型 DNA とする PCR 条件 5μℓ 鋳型 DNA 1.0 ng/μℓ 1.0μℓ 1.0 ng プライマー フォワード リバース各 1.0μM 1.0μℓ 各 0.2μM dntps 各 2 mm 0.5μℓ 各 0.2 mm μℓ buffer for KOD Plus- 25 mm 硫酸マグネシウム水溶液 0.2μℓ 1.0 mm 1.675μℓ KOD Plus- DNA ポリメラーゼ 0.125μℓ unit 95 3 分間の後 95, 20 秒 60, 30 秒 68, 20 秒 を 35 サイクル行った 電気泳動実験 B で泳動を行った アプライ量は 0.5μℓ/well である

6 電気泳動実験 A 濃縮ゲルを採用しない実験 1) ゲル作成用のガラスプレートを組み立てる 2) 分離ゲル溶液を調整し 注入する 3) サンプルコームを挿入 分放置してゲル化させる 4) 泳動槽用緩衝液 150 と F 液 1.5 を泳動槽下部に入れる 5) サンプルコームとパッキンを抜いたゲルを泳動槽にセットする 6) 泳動槽上部に泳動槽用緩衝液を入れる 7) アプライする PCR 産物に 2 分の 1 倍量の泳動用サンプル調製液を注入した後 混合する 8) 各 well にサンプルをアプライした後 電源をセットする 9) 通電を始める 定電流法 25 ma/ゲル 約 100 分間 10) 泳動用サンプル調製液に入っている BPB の色素ライン 泳動先端 が ゲル下端より1cm に 来た時泳動終了 11) ゲルをガラスプレートから剥がす 12) SYBR Green I 染色液 10 にゲルを浸し 5 10 分間ゆっくり振とうする 13) ゲルを撮影する 電気泳動実験 B 濃縮ゲルを採用した実験 1) ゲル作成用のガラスプレートを組み立てる 2) 分離ゲル溶液を調整し 注入する 3) 蒸留水 1 2 を注入し 重層した後 分放置してゲル化させる 4) 上層の蒸留水をトイレットペーパーなどで取り除いた後 ろ紙で余分な水分をさらに除く 5) 濃縮ゲル溶液を調整し 注入する 6) サンプルコームを挿入 分放置してゲル化させる 7) 泳動槽用緩衝液 150 と F 液 1.5 を泳動槽下部に入れる 8) サンプルコームとパッキンを抜いたゲルを泳動槽にセットする 9) 泳動槽上部に泳動槽用緩衝液を入れる 10) アプライする PCR 産物に 2 分の 1 倍量の泳動用サンプル調製液を注入した後 混合する 11) 各 well にサンプルをアプライした後 電源をセットする 12) 通電を始める 定電流法 25 ma/ゲル 約 100 分間 13) 泳動用サンプル調製液に入っている BPB の色素ライン 泳動先端 が ゲル下端より1cm に 来た時泳動終了 14) 分離ゲルのみをガラスプレートから剥がす 15) SYBR Green I 染色液 10 にゲルを浸し 5 10 分間ゆっくり振とうする 16) ゲルを撮影する

7 実施例 A rscn4a の PCR 産物 bp 野生型を鋳型 DNA とした PCR 産物 数字 各8種類の変異型を鋳型 DNA とした PCR 産物 +各数字 野生型と各8種類の変異型の 1:1 混合を鋳型とした PCR 産物 G/A は 野生型のグアニン塩基がアデニン塩基に置換した変異型であることを示す 100 bp +1 G/A 1 +5 G/T G/T 2 A/G C/A T/A 6 +7 G/C 7 +8 C/G A/G A/G 5 +3 A/G C/A G/A 200 bp T/A 7 G/C +8 C/G 8 トラブルシューティング 2 参照 実施例 B 患者 10 人の hscn5a エクソン 21 の PCR 産物 100 bp 電気泳動の結果 患者 2 に複数本 2 本 のバンドが検出された 全サンプルにおいて 同領域を DNA シークエンサーでも解析を行った その結果 患者 2 のエクソンーイントロン境界部配列 5 イントロン配列 において グアニン塩基からアデニン塩基への一塩基置換が検出された これは スプライス異常を示唆 する変異であり これまでに報告のない世界で初めての検出例であった トラブルシューティング 3 参照

8 使用条件と注意事項 亜鉛サイクレンは 研究用です 一般的な化学の使用法を理解している研究者により取り扱ってく ださい 人体や動物には絶対に使用しないでください 匂いや刺激性はありませんが 皮膚に付着したり目 に入ったりした場合 すぐに多量の水で洗い流してください トラブルシューティング1 アプライするサンプル量が多く ゲル染色後に DNA バンドのテーリングが観察されるような時は 濃縮ゲ ルを採用した実験プロトコルで検討して下さい トラブルシューティング 2 泳動する DNA 断片 PCR 産物 の長さが 200 bp 以内であれば変異塩基の種類に関わらず検出可能であ ることを確かめています トラブルシューティング 3 サンプルのアプライ量が 2.0 μℓ/well より多くなる場合においては 濃縮ゲルを採用した電気泳動実験 B の手順を行うことでよりシャープな泳動像が観察できます 亜鉛サイクレン PAGE の説明図 Edited by Eiji Kinoshita, Emiko Kinoshita-Kikuta, and Tohru Koike Department of Functional Molecular Science, Graduate School of Biomedical Sciences, Hiroshima University

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