プロトコール集 ( 研究用試薬 ) < 目次 > 免疫組織染色手順 ( 前処理なし ) p2 免疫組織染色手順 ( マイクロウェーブ前処理 ) p3 免疫組織染色手順 ( オートクレーブ前処理 ) p4 免疫組織染色手順 ( トリプシン前処理 ) p5 免疫組織染色手順 ( ギ酸処理 ) p6 免疫

Similar documents
Western BLoT Immuno Booster

Western BLoT Rapid Detect

ChIP Reagents マニュアル

ÿþ

Microsoft Word ab205921_自動染色プロトコール_YU_IS.docx

プロトコル 細胞 増殖 / 毒性酸化ストレス分子生物学細胞内蛍光プローブ細胞染色ミトコンドリア関連試薬細菌研究用試薬膜タンパク質可溶化剤ラベル化剤二価性試薬イオン電極 その他 機能性有機材料 酵素 (POD,ALP) を標識したい 利用製品 < 少量抗体 (10μg) 標識用 > Ab-10 Rap

DNA/RNA調製法 実験ガイド

PanaceaGel ゲル内細胞の観察 解析方法 1. ゲル内細胞の免疫染色 蛍光観察の方法 以下の 1-1, 1-2 に関して ゲルをスパーテルなどで取り出す際は 4% パラホルムアルデヒドで固定してから行うとゲルを比較的簡単に ( 壊さずに ) 取り出すことが可能です セルカルチャーインサートを

組織からのゲノム DNA 抽出キット Tissue Genomic DNA Extraction Mini Kit 目次基本データ 3 キットの内容 3 重要事項 4 操作 4 サンプル別プロトコール 7 トラブルシューティング 9 * 本製品は研究用です *

TaKaRa Bradford Protein Assay Kit

Microsoft Word - Dr. Abe.doc

ISOSPIN Blood & Plasma DNA

TaKaRa BCA Protein Assay Kit

TaKaRa PCR Human Papillomavirus Detection Set

培養細胞からの Total RNA 抽出の手順 接着細胞のプロトコル 1. プレート ( またはウエル ) より培地を除き PBSでの洗浄を行う 2. トリプシン処理を行い 全量を1.5ml 遠心チューブに移す スクレイパーを使って 細胞を掻き集める方法も有用です 3. 低速遠心 ( 例 300 g

[PDF] GST融合タンパク質バッチ精製プロトコール

【Webinar】蛍光免疫染色の基礎

Microsoft PowerPoint - ELISA MAX Standard Protocol

Microsoft Word - タンパク質溶液内酵素消化 Thermo

TaKaRa PCR Human Papillomavirus Typing Set

The Science of Western Blotting

Microsoft Word - Zenon Mouse IgG Labeling Kit_J1_28Apr2008.doc

Microsoft Word - iBind Western System 日本語簡易取扱説明書


TaKaRa POD Conjugate For Mouse Tissue/For Tissue

おすすめのローディング コントロール抗体 ターゲット 免疫動物 * モノ M ポリ P 交差性 * 製品番号 Actin Rb P Ms, Rat, Chk, Cow, Hu, Xl,Dm, Zfsh ab1801 alpha sarcomeric Actin Ms M Hu, Ms, Rat ab

ISOSPIN Plasmid

Taro-kv12250.jtd

パナテスト ラットβ2マイクログロブリン

コメDNA 抽出キット(精米20 粒スケール)

土壌溶出量試験(簡易分析)

PowerPoint プレゼンテーション

GMP-140 (P-selectin) EIA Kit

生物学に関する実験例 - 生化学 / 医療に関する実験例 ラジオアッセイ法によるホルモン測定 [ 目的 ] 本実習では, 放射免疫測定 (Radioimmunoassay,RIA) 法による血中インスリンとイムノラジオメトリックアッセイ ( 免疫放射定測定 Immunoradiometric ass

Microsoft Word - flagipt1bul_ Edit.doc

Cytotoxicity LDH Assay Kit-WST

Influenza Virus Typing Set

鶏大腸菌症 ( 組換え型 F11 線毛抗原 ベロ細胞毒性抗原 )( 油性アジュバント加 ) 不活化ワクチン平成 20 年 6 月 6 日 ( 告示第 913 号 ) 新規追加 平成 25 年 9 月 26 日 ( 告示第 2480 号 ) 一部改正 1 定義組換え型 F11 線毛抗原産生大腸菌及びベ

注釈 * ここでニッケルジメチルグリオキシム錯体としてのニッケルの重量分析を行う場合 恒量値を得るために乾燥操作が必要だが それにはかなりの時間を要するであろう ** この方法は, 銅の含有量が 0.5% 未満の合金において最も良い結果が得られる 化学物質および試薬 合金試料, ~0.5 g, ある

650 Fluorophore 690 Fluorophore DMSO ( 1 x 500 μl) 1 x 1.5 ml) Opal polymer HRP Ms+Rb ( 2 x 50mL) Blocking/Ab Diluent (1 x 100 ml) 4 x 250ml) * 数量は Op

Microsoft PowerPoint - 免疫染色における.ppt

プロトコル 蛍光色素を標識したい 利用製品 < 少量抗体 (10μg) 標識用 > ICG Labeling Kit- NH 2 [LK31] - アミノ基標識用 - R-Phycoerythrin Labeling Kit - NH 2 [LK23] Ab-10 Rapid Fluorescein

PowerPoint プレゼンテーション

PowerPoint プレゼンテーション

EGFR の exon18,19,21 はチロシンキナーゼ領域をコードしており この部分の遺伝 変異によりチロシンキナーゼ活性が恒常的に亢進することが 細胞のがん化に関与している. exon18,19,21 の変異を調べ 変異があるとイレッサが有効 exon20 の codon790 に変異 (T7

Chromatin Immunoprecipitation (ChIP)

ウェスタンブロッティング


Microsoft Word - ライカIHCRefineNovoLinkキットS-100 第3版記載整備.d

Taro-SV02500b.jtd

Microsoft PowerPoint - LEGEND MAX Protocol

Mouse IgG EIA Kit

目次第 1 章緒言 3 第 2 章 Cellvibrio sp. OA-2007 由来の酵素によるアルギン酸の分解 実験材料調製 実験材料 寒天分解菌の培養 粗酵素の調製 実験方法 分解反応実験 5

Microsoft Word - NKB A3302K.doc

1-4. 免疫抗体染色 抗体とは何かリンパ球 (B 細胞 ) が作る物質 特定の ( タンパク質 ) 分子に結合する 体の中に侵入してきた病原菌や毒素に結合して 破壊したり 無毒化したりする作用を持っている 例 : 抗血清馬などに蛇毒を注射し 蛇毒に対する抗体を作らせたもの マムシなどの毒蛇にかまれ

スライド 1

参考以下に示す値は参考値とする 卵一次希釈液のタンパク質を 2-D Quant kit(ge ヘルスケアバイオサイエンス社製 ) により定量するとき その濃度は卵標準品原液のタンパク質濃度の 0.08 倍 ~0.12 倍である 卵標準品原液について SDS-PAGE を行うとき 7. に示すような泳

Gen とるくん™(酵母用)High Recovery

Oligotex ™-dT30 <Super> mRNA Purification Kit (From total RNA)

技術2本文.indd

蛋白質科学会アーカイブ ストップト・フロー法を用いた速度論測定

酵素の性質を見るための最も簡単な実験です 1 酵素の基質特異性と反応特異性を調べるための実験 実験目的 様々な基質を用いて 未知の酵素の種類を調べる 酵素の基質特異性と反応特異性について理解を深める 実験準備 未知の酵素溶液 3 種類 酵素を緩衝液で約 10 倍に希釈してから使用すること 酵素溶液は

土壌含有量試験(簡易分析)

セミドライブロッティング実験方法 Semi-dry Blotting Protocol for Western Blotting 平成 16 年 4 月 19 日作製 平成 18 年 12 月 12 日改定 平成 21 年 1 月 13 日改定アトー株式会社 1

Vitronectin EIA Kit

目 次 Ⅰ. キットの構成 3 Ⅱ. その他必要な器具 装置 3 Ⅲ. 試薬の調製法 4 Ⅳ. 操作手順 ( ローレンジ法 ) 5 小麦タンパク質濃度の算出法 6 標準曲線の例 6 グルテン含量の算出法 7 Ⅴ. 操作手順 ( ハイレンジ法 ) 7 グルテン含量の算出法 8 Ⅵ. キットの保存条件と

タンパク質は 電気泳動後にタンパク質を可視化するための最も簡単で迅速な方法です バイオ ラッドは感度 定量性 質量分析計対応に合わせた可視 蛍光剤を取り扱っています CBB クマシーブリリアントブルーは を行ったゲル中のタンパク質をするための最も一般的な方法です バイオ ラッドでは 用途に合わせて2

免疫組織化学染色

実験操作方法

( 別添 ) ヒラメからの Kudoa septempunctata 検査法 ( 暫定 ) 1. 検体採取方法食後数時間程度で一過性の嘔吐や下痢を呈し, 軽症で終わる有症事例で, 既知の病因物質が不検出, あるいは検出した病因物質と症状が合致せず, 原因不明として処理された事例のヒラメを対象とする

ROWCatPathology_J.book

キレート滴定

基質溶液 ( 脂質成分を含む製品では 本手順はデータの精度に大きく影響します 本手順の記載は特に厳守ください ) 添付の基質溶液は希釈不要です 融解し室温に戻した後 使用直前に十分に懸濁してください (5 分間の超音波処理を推奨いたします ) 解凍後の基質溶液の残りは 繰り返しの凍結融解を避けるため

BKL Kit (Blunting Kination Ligation Kit)

P TOYOPEARL TOYOPEARL DEAE-650S, M, C TOYOPEARL CM-650S, M, C TOYOPEARL SP-650S, M, C TOYOPEARL SuperQ-650S, M, C TOYOPEARL QAE-550C TOYOPEARL

siRNA / miRNA transfection KIT

Product Description Recombinant tagged proteins are widely used for protein purification and protein characterization. There are many purification met

原理 a) 組織の固定 mrna を細胞内に保存する- 細胞が死ぬと細胞内の mrna の分解が急速に進むため この分解を防ぎ出来るだけ生きている時と近い状態に細胞や組織を保存する必要がある これを固定と呼ぶが in situ hybridazation (ISH) 法においては この作業が実験の成

A24656JP_EVOS_Onstage_Incubator_cover.indd

スライド 1

dr

Microsoft Word - Fluo4 Direct Calcium Assay Kits_J1_3Apr2009.doc

<4D F736F F D B82C982C282A282C482512E646F63>

PTM PTM Cell Signaling Technology CST 1,000 CST CST p.13 CST CST 2

後期化学_01_濃度


WB関連試薬2015.indd

Bacterial 16S rDNA PCR Kit

目次 IPS 細胞の継代... 3 細胞継代後の培地交換... 5 IPS 細胞の凍結... 6 凍結ストックの解凍... 8 細胞融解後の培地交換 融解後 1 日目 ON-FEEDER IPS 細胞を FEEDER-FREE 条件にて継代する方法 参考資料 AC

2.2 グルタルアルデヒドグルタルアルデヒドは種々のアミノ酸と反応し, 速やかにタンパク質を架橋するが ( 図 1;lane 4), その架橋反応のメカニズムに関しては十分には解明されていない. グルタルアルデヒドの水溶液はカルボニル基に基づく紫外吸収の極大を 280 nm に示すが, 共役した二重

FFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFF Vol. 32, pp , 2004 FFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFFF

2

取扱説明書

正常ラット軟骨細胞 Normal Rat Cartilage Cell

プロトコル 細胞 増殖 / 毒性酸化ストレス分子生物学細胞内蛍光プローブ細胞染色ミトコンドリア関連試薬細菌研究用試薬膜タンパク質可溶化剤ラベル化剤二価性試薬イオン電極 その他 機能性有機材料 タンパク質を定量したい 使用製品 -Proteostain- Protein Quantification

Taro-kv20025.jtd

SSH資料(徳島大学総合科学部 佐藤)

日本食品成分表分析マニュアル第4章

本実験では 複製された DNA や転写された RNA を個々の細胞で可視化して細胞核の 機能と細胞周期の制御を理解すること 及び 染色体標本の作成により染色体の構造 多様性 分配機構について理解することを目的とする 実習の流れ 第一回実習説明 複製された DNA 複製の検出と観察 第二回染色体標本の

Product Description Recombinant tagged proteins are widely used for protein purification and protein characterization. There are many purification met

Transcription:

< 目次 > 免疫組織染色手順 ( 前処理なし ) p2 免疫組織染色手順 ( マイクロウェーブ前処理 ) p3 免疫組織染色手順 ( オートクレーブ前処理 ) p4 免疫組織染色手順 ( トリプシン前処理 ) p5 免疫組織染色手順 ( ギ酸処理 ) p6 免疫組織染色手順 ( ギ酸処理後 マイクロウェーブまたはオートクレーブ処理 )p7 抗原ペプチドによる抗体吸収試験 p8 ウエスタン ブロッティング (Western Blotting) p9 免疫沈降法 (Immuno-precipitation) p10 p. 1

免疫組織染色手順 ( 前処理なし ) 5. TBS-T にて軽くリンス洗浄 6. 正常血清ブロッキング処理 : 室温 30 分 Goat Whole Serum を 5 % に希釈して使用 ( 2 次抗体の動物血清を使用 ) 7. TBS-T にて軽くリンス洗浄 8. 1 次抗体反応 :4 C 一昼夜インキュベーション 染色試薬によっても反応性が異なりますので 使用濃度は製品説明書の表示を参考に各施設でご検討ください 9. TBS-T 洗浄 5 分 3 回 10. 2 次抗体反応 : 室温 30 分例 ) 11. TBS-T 洗浄 5 分 3 回 12. ABC 試薬の反応 : 室温 30 分 (Vectastain ABC Kit, PEROXIDASE STANDARD PK-4000) 13. TBS-T 洗浄 5 分 3 回 14. 発色 : 室温 1 10 分 15. 流水洗浄 3 分 16. 核染色 ( ヘマトキシリン ) 17. 色出し 5 分 18. 脱水 19. 透徹 20. 封入 120625/KK p. 2

免疫組織染色手順 ( マイクロウェーブ前処理 ) 5. マイクロウェーブ処理 * 90 C 10 分 (10 mm クエン酸緩衝液, ph 6.0) 6. 放置冷却 7. 流水洗浄 3 分 8. TBS-T にて軽くリンス洗浄 9. 正常血清ブロッキング処理 : 室温 30 分 Goat whole serum を 5 % に希釈して使用 ( 2 次抗体の動物血清を使用 ) 10. TBS-T にて軽くリンス洗浄 11. 1 次抗体反応 :4 C 一昼夜インキュベーション 染色試薬によっても反応性が異なりますので 使用濃度は製品説明書の表示を参考に各施設でご検討ください 12. TBS-T 洗浄 5 分 3 回 13. 2 次抗体反応 : 室温 30 分例 ) 14. TBS-T 洗浄 5 分 3 回 15. ABC 試薬の反応 : 室温 30 分 (Vectastain ABC Kit, PEROXIDASE STANDARD PK-4000) 16. TBS-T 洗浄 5 分 3 回 17. 発色 : 室温 1 10 分 18. 流水洗浄 3 分 19. 核染色 ( ヘマトキシリン ) 20. 色出し 5 分 21. 脱水 22. 透徹 23. 封入 * 家庭用電子レンジを使用する場合 1 500 ml ビーカーにクエン酸緩衝液を 500 ml 入れ 組織切片をバスケットごと浸ける 2 家庭用電子レンジ内で沸騰後 さらに 10 分照射する (500 W の場合 ) 注 : クエン酸緩衝液が蒸散してしまわないように 軽くラップをかけてください 10 mm クエン酸緩衝液 (ph 6.0) の調製 1 クエン酸 C3H4(OH)(COOH)3 /H2O = 210.14 2.1 g を 900 ml の精製水に溶解する 2 水酸化ナトリウム液にて ph 6.0 に調節する (2M-NaOH でおよそ 13 ml 加える ) 3 さらに精製水を加え 1,000 ml にメスアップする 110215/KK 130108/KK p. 3

免疫組織染色手順 ( オートクレーブ前処理 ) 5. オートクレーブ処理 * 110 C 10 分 (10 mm クエン酸緩衝液, ph 6.0) 6. 放置冷却 7. 流水洗浄 3 分 8. TBS-T にて軽くリンス洗浄 9. 正常血清ブロッキング処理 : 室温 30 分 Goat whole serum を 5 % に希釈して使用 ( 2 次抗体の動物血清を使用 ) 10. TBS-T にて軽くリンス洗浄 11. 1 次抗体反応 :4 C 一昼夜インキュベーション 染色試薬によっても反応性が異なりますので 使用濃度は製品説明書の表示を参考に各施設でご検討ください 12. TBS-T 洗浄 5 分 3 回 13. 2 次抗体反応 : 室温 30 分例 ) 14. TBS-T 洗浄 5 分 3 回 15. ABC 試薬の反応 : 室温 30 分 (Vectastain ABC Kit, PEROXIDASE STANDARD PK-4000) 16. TBS-T 洗浄 5 分 3 回 17. 発色 : 室温 1 10 分 18. 流水洗浄 3 分 19. 核染色 ( ヘマトキシリン ) 20. 色出し 5 分 21. 脱水 22. 透徹 23. 封入 * オートクレーブ処理 500 ml ビーカーにクエン酸緩衝液を 500 ml 入れ 組織切片をバスケットごと浸け オートクレーブにかける 10 mm クエン酸緩衝液 (ph 6.0) の調製 1 クエン酸 C3H4(OH)(COOH)3 /H2O = 210.14 2.1 g を 900 ml の精製水に溶解する 2 水酸化ナトリウム液にて ph 6.0 に調節する (2M-NaOH でおよそ 13 ml 加える ) 3 さらに精製水を加え 1,000 ml にメスアップする p. 4

免疫組織染色手順 ( トリプシン前処理 ) 5. TBS-T にて軽くリンス洗浄 6. 0.1 % トリプシン処理室温 30 分 組織の固定条件や用いる組織により 反応条件が異なる場合がありますので 各施設での条件設定をお勧め致します 7. TBS-T にて軽くリンス洗浄 8. 正常血清ブロッキング処理 : 室温 30 分 Goat whole serum を 5 % に希釈して使用 ( 2 次抗体の動物血清を使用 ) 9. TBS-T にて軽くリンス洗浄 10. 1 次抗体反応 :4 C 一昼夜インキュベーション 染色試薬によっても反応性が異なりますので 使用濃度は製品説明書の表示を参考に各施設でご検討ください 11. TBS-T 洗浄 5 分 3 回 12. 2 次抗体反応 : 室温 30 分例 ) 13. TBS-T 洗浄 5 分 3 回 14. ABC 試薬の反応 : 室温 30 分 (Vectastain ABC Kit, PEROXIDASE STANDARD PK-4000) 15. TBS-T 洗浄 5 分 3 回 16. 発色 : 室温 1 10 分 17. 流水洗浄 3 分 18. 核染色 ( ヘマトキシリン ) 19. 色出し 5 分 20. 脱水 21. 透徹 22. 封入 p. 5

免疫組織染色手順 ( ギ酸処理 ) 5. ギ酸処理濃度は 99 % 以上を使用 (70 % 以上なら可能 ): 室温 5 分 6. 流水洗浄 3 分 7. TBS-T にて軽くリンス洗浄 8. 正常血清ブロッキング処理 : 室温 30 分 Goat Whole Serum を 5 % に希釈して使用 ( 2 次抗体の動物血清を使用 ) 9. TBS-T にて軽くリンス洗浄 10. 1 次抗体反応 :4 C 一昼夜インキュベーション 染色試薬によっても反応性が異なりますので 使用濃度は製品説明書の表示を参考に各 施設でご検討ください 11. TBS-T 洗浄 5 分 3 回 12. 2 次抗体反応 : 室温 30 分例 ) 13. TBS-T 洗浄 5 分 3 回 14. ABC 試薬の反応 : 室温 30 分 (Vectastain ABC Kit, PEROXIDASE STANDARD PK-4000) 15. TBS-T 洗浄 5 分 3 回 16. 発色 : 室温 1 10 分 17. 流水洗浄 3 分 18. 核染色 ( ヘマトキシリン ) 19. 色出し 5 分 20. 脱水 21. 透徹 22. 封入 120420/KK 170925/KI p. 6

免疫組織染色手順 ( ギ酸処理後 マイクロウェーブまたはオートクレーブ処理 ) 5. ギ酸処理濃度は 99 % 以上を使用 (70 % 以上なら可能 ): 室温 5 分 6. 流水洗浄 3 分 7. マイクロウェーブ * またはオートクレーブ処理 110 C, 10 分 (10 mm クエン酸緩衝液, ph 6.0) 8. 放置冷却 9. 流水洗浄 3 分 10. TBS-T にて軽くリンス洗浄 11. 正常血清ブロッキング処理 : 室温 30 分 Goat whole serum を 5 % に希釈して使用 ( 2 次抗体の動物血清を使用 ) 12. TBS-T にて軽くリンス洗浄 13. 1 次抗体反応 :4 C 一昼夜インキュベーション 染色試薬によっても反応性が異なりますので 使用濃度は製品説明書の表示を参考に各施設でご検討ください 14. TBS-T 洗浄 5 分 3 回 15. 2 次抗体反応 : 室温 30 分例 ) 16. TBS-T 洗浄 5 分 3 回 17. ABC 試薬の反応 : 室温 30 分 (Vectastain ABC Kit, PEROXIDASE STANDARD PK-4000) 18. TBS-T 洗浄 5 分 3 回 19. 発色 : 室温 1 10 分 20. 流水洗浄 3 分 21. 核染色 ( ヘマトキシリン ) 22. 色出し 5 分 23. 脱水 24. 透徹 25. 封入 * 家庭用電子レンジを使用する場合 1 500 ml ビーカーにクエン酸緩衝液を 500 ml 入れ 組織切片をバスケットごと浸ける 2 家庭用電子レンジ内で沸騰後 さらに 10 分照射する (500 W の場合 ) 注 : クエン酸緩衝液が蒸散してしまわないように 軽くラップをかけてください 10 mm クエン酸緩衝液 (ph 6.0) の調製 1 クエン酸 ( C3H4(OH)(COOH)3 /H2O = 210.14 ) 2.1 g を 900 ml の精製水に溶解する 2 水酸化ナトリウム液にて ph 6.0 に調節する (2M-NaOH でおよそ 13 ml 加える ) 3 さらに精製水を加え 1,000 ml にメスアップする 170925/KI p. 7

抗原ペプチドによる抗体吸収試験 ペプチドによる吸収法 (1) 抗体希釈バッファー (1 % BSA in PBS) へ抗体溶液とペプチド溶液を 抗体 : ペプチド=1 mol: 20 mol になるように加えます ペプチド溶液の代わりに精製水を加えたもの ( ペプチド (-)) をコントロールとします (2) 4 C で一晩転倒混和し十分に反応させます この時ペプチド (-) も同時におこないます (3) 上記の吸収処理を終えたものを WB または免疫染色の一次抗体として使用します 計算例 弊社では抗体の分子量を約 150,000 として計算しています 抗体 Code No.18415 Anti-Human VEGF-C (103) Rabbit IgG の場合吸収用ペプチド Code No.18417 Human VEGF-C (103) Antigen Peptides 分子量 1,827 重量比率は抗体 : ペプチド = 1 mol: 20 mol = 150,000: 1,827 20 = 1g: 0.24 g となります 仮に抗体溶液濃度 : 100 μg/ml ペプチド溶液濃度 : 100 μg/ml を用いて 抗体終濃度 5 μg/ml の溶液を 1 ml 調製する場合は 抗体溶液 ペプチド溶液 1 % BSA in PBS ペプチド (+) 50 μl 12 μl 938 μl ペプチド (-) 50 μl - 950 μl の混合比率となります 4 C 一晩 転倒混和 WB または免疫染色に使用します 110622/KK p. 8

ウエスタン ブロッティング (Western Blotting) 試薬 : 2x Sample Buffer 125mM Tris-HCl (ph6.8), 4% SDS, 20% Glycerol, 10% 2-Mercaptoethanol, 0.02% BPB HRP 標識 2 次抗体 Anti-Rabbit IgG (H+L) Goat IgG Fab' HRP (IBL, #17502) あるいは Anti-Mouse IgG (H+L) Goat IgG Fab' HRP (IBL, #17601) ブロッキング溶液 3 % milk, 1 % BSA, 0.05 % NaN3/PBS 洗浄液 0.05% Tween20/PBS ECL western detection kit (GE healthcare, #RPN2106) 方法 : 1. PAGE: 調製済みサンプル 10-20μL を 7-12 % 濃度のアクリルアミドゲルにアプライし 電気泳動 2. ブロッティング : 泳動操作によりナイロンメンブランなどの膜に転写 3. 転写膜のブロッキング : ブロッキング溶液 37 C で 2 時間 4. 洗浄液で洗浄 : 5 分 3 回 5. 1 次抗体の反応 ( 指定の濃度で ):37 C で 2 時間あるいは 4 C で一昼夜 6. 洗浄液で洗浄 : 5 分 3 回 7. 2 次抗体の反応 ( 製品指定の濃度で ): 37 C で 1 時間 8. 洗浄液で洗浄 : 5 分 3 回 9. ECL による検出 : 浸透時間 :1 分間 感光時間は 1 分間 ~1 時間 ( サンプルによる ) サンプル調製例 1) 細胞 Lysate 1 培養細胞を PBS で洗浄 必要であればトリプシン処理 2 トリプシン停止後 PBS で洗浄 ( 細胞数を計測しておく ) 3 2x Sample Buffer に懸濁 (1-5 x 10 5 cells/10μl) 4 ソニケーション 5 沸騰処理 : 3 分間 6 遠心分離 : 14000rpm, 4 C で 3 分間 7 上清を使用する 2) 細胞培養上清そのまま使用する p. 9

免疫沈降法 (Immuno-precipitation) 試薬 1. TNE 緩衝液 : 10 mm Tris-HCl (ph7.8), 1% NP-40, 0.15 M NaCl, 1 mm EDTA, 10 μg/ml aprotinin 2. Protein G-Sepharose 4 Fast Flow (GE Healthcare #17-0618-01): 方法 TNE 緩衝液で洗浄しておく 1. 調製したサンプル ( 抽出物上清など ) に Protein G-Sepharose を加える :50 μl/ サンプル 1 ml 2. 転倒混和 :4 C 一昼夜 3. 遠心分離 :4 C 14,000 rpm 20 分 4. 上清に抗体を加える : 約 3 μg/ サンプル 100-400 μl 5. 転倒混和 :4 C 1 時間 6. Protein G-Sepharose を加える :20 μl/ サンプル 100-400 μl 7. 転倒混和 :4 C 1 時間 8. TNE 緩衝液で洗浄 :4 C 5,000 rpm 1 分 X 5 回 9. 沈殿物 (immunoprecipitate) 10. WB などで確認する p. 10