JR09報告ファイル

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今 回 の 解 析 の 要 点 参 加 施 設 における 抗 体 有 無 の 結 果 比 較 抗 体 有 無 結 果 の 不 一 致 の 原 因 調 査 判 定 結 果 比 較 判 定 結 果 の 不 一 致 原 因 調 査 IgM 性 抗 体 検 出 の 比 較 総 合 評 価 今 後 の 課 題

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,255 7, ,355 4,452 3,420 3,736 8,206 4, , ,992 6, ,646 4,

Transcription:

第 2 回関東 HLA 研究会学術集会 ワークショップ 蛍光ビーズ法 HLA 抗体検査試薬の 半量法に関するワークショップ 中島文明 日本赤十字社中央血液研究所研究開発部 2018 年 6 月 9 日 ( 土 ) 東京大学本郷キャンパス医学部 1 号館 3 階講堂

序 論 昨年 公表された論文では LABScreen Single Antigen(LS-SA) 試薬について操作全体の効率化を検討し約 70% の時間短縮を達成したとされる その中で ビーズも標準量と半量で扱っているが なぜか双方の明確な比較はされていない (Hum Immunol 78, 2017) 本研究会では ビーズ量の違いが試薬性能に影響するか複数施設で検証することにした 参加 11 施設に対し 4 種類のHLA 抗血清を共通配布した 各施設はビーズを標準量と半量でそれぞれ測定した LS-SA 試薬は クラスIが全てLot.010 クラスIIがLot.011と012 半々であった 可能な限り施設間のバイアスを排除したいため 抗血清は未処理のまま使用し 操作はメーカーの instruction manualに従うように指示した 様々な組み合わせで ビーズ標準量と半量の測定結果を比較すると ピアソンの積率相関係数や線形回帰直線等の数値データは どの施設も良好に見えた しかしながら Raw dataで比較するとバックグラウンド シグナルのバラツキなど操作環境の影響は十分に排除できていない バックグラウンドの制御が相関に影響することも認められた 集会では このような様々な観点の解析結果を提示するが 半量法の可否に関しては その使用目的を踏まえた上で各施設の判断に委ねたい 2

はじめに ダルハウジー大学 ( カナダ ) Rapid optimized FCXM assay Halifax protocol (less than 40 min) Halifaster protocol Rapid optimized SAB assay ROB protocol (25 min) 分析評価時間の短縮が目的 It s about time: The development and validation of a rapid optimized single antigen bead (ROB) assay protocol for LABScreen Robert S. Liwski a, Anna L. Greenshields a, Cathi Murphey b, Robert A. Bray c, Howard M. Gebel c a Department of Pathology, Dalhousie University, Halifax, Nova Scotia B3H 1V8, Canada b Southwest Immunodiagnostics Inc., San Antonio, San Antonio, TX 78229, USA c Department of Pathology, Emory University Hospital, Atlanta, GA 30322, USA Human Immunology 78 (2017) 489 499 3

Comparison of LABScreen SAB protocols Liwski RS, et al. Hum Immunol. 78 (2017) 489 499 time amount amount, dil. 4

Beads 量 5μL 2.5µL の事前調査 ビーズを減量しても このままで問題ない! 5

実施要項 蛍光ビーズ法 HLA 抗体検査試薬の半量法に関するワークショップ [ 試薬 ]: 参加施設負担 LABScreen Single Antigen HLA Class I - Combi (One Lambda #LS1A04) LABScreen Single Antigen HLA Class II - Group 1(One Lambda #LS2A01) PE-Conjugated Goat Anti-Human IgG (One Lambda #LS-AB2) 陰性コントロール血清は使用せず ソフトウェア既定値参照 [ 検体 ]: 既知 HLA 抗血清 0.5mL 4 本を配布 [ 方法 ]: 参加各施設で実施 各抗血清についてビーズ標準量 5µL と半量 2.5µL で同時測定する 測定データ ( ルミネックスの output.csv) を 2018 年 2 月 28 日 ( 水 ) 締切りで提出 [ 集計 解析 ]: 日本赤十字社中央血液研究所 HLA Fusion Software VERSION 4.1(One Lambda) nmfi 値 ビーズ カウント数など解析用データを抽出ビーズ標準量 5µLと半量 2.5µLの相関解析 ビーズ カウント数 測定時間 施設間差などを解析 6

蛍光ビーズ法 HLA 抗体検査試薬の半量法に関するワークショップ [ 操作上の注意点 ]: 測定前の抗血清の処理方法測定条件を一定に保つため 送付した状態のまま 転倒混和とスピンダウンで測定強遠心 EDTA 処理 凍結融解などの前処置を行わない! 操作手順 原則, 試薬に添付されている取扱説明書 (Product Insert; LS-LSCN-PI-EN-00) に従う ビーズ量以外は すべて同一条件で操作 抗血清を分注してからビーズを分注する 陰性コントロール血清は測定しない ( ソフトウェア既定値参照で解析 ) 同一バッチに他の測定を混在させない ルミネックス測定サンプル名のルールサンプル名 = 抗血清名 (K1~K4)+ HLAクラス (C1: クラスI C2: クラス2)+ ビーズ量 (S: 標準量 5µL H: 半量 2.5µL) K1C1S K2C1S K3C1S K4C1S K1C1H K2C1H K3C1H K4C1H K1C2S K2C2S K3C2S K4C2S K1C2H K2C2H K3C2H K4C2H 施設コード P01~P11: 中央血液研究所でランダム発番し該当施設に個別通知 7

DR51 DR51 DR53 DR53 DR52 DR52 DR52 DR16 DR15 DR15 DR14 DR13 DR12 DR12 DR11 DR10 DR9 DR7 DR4 DR4 DR4 DR4 DR17 DR1 B67 B56 B54 B48 B46 B61 B61 B60 B39 B35 B75 B62 B7 B59 B58 B52 B51 B51 B44 B44 B37 B13 B13 A33 A31 A30 A26 A24 A11 A11 A3 A2 A2 A1 Bw6 Bw6 Bw6 Bw6 Bw6 Bw6 Bw6 Bw6 Bw6 Bw6 Bw6 Bw6 Bw6 Bw4 Bw4 Bw4 Bw4 Bw4 Bw4 Bw4 Bw4 Bw4 Bw4 DRB5*02:02 DRB5*01:01 DRB4*01:03 DRB4*01:01 DRB3*03:01 DRB3*02:02 DRB3*01:01 DRB1*16:02 DRB1*15:02 DRB1*15:01 DRB1*14:54 DRB1*13:01 DRB1*12:02 DRB1*12:01 DRB1*11:01 DRB1*10:01 DRB1*09:01 DRB1*07:01 DRB1*04:05 DRB1*04:04 DRB1*04:03 DRB1*04:01 DRB1*03:01 DRB1*01:01 B*67:01 B*56:01 B*54:01 B*48:01 B*46:01 B*40:06 B*40:02 B*40:01 B*39:01 B*35:01 B*15:11 B*15:01 B*07:02 B*59:01 B*58:01 B*52:01 B*51:02 B*51:01 B*44:03 B*44:02 B*37:01 B*13:02 B*13:01 A*33:03 A*31:01 A*30:01 A*26:01 A*24:02 A*11:02 A*11:01 A*03:01 A*02:06 A*02:01 A*01:01 K1~K4 HLA 抗体特異性 HLA Specificity Molecular Specificity %PRA nmfi>=5,000 K1 K2 K3 K4 IgG 4 4 4 1 1 1 8 1 1 1 1 8 8 8 8 8 8 8 8 8 8 8 8 8 8 1 8 8 8 6 8 8 8 1 1 1 1 1 4 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 4 1 1 1 1 1 1 1 28.6% C1q 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 8 8 1 1 1 1 1 1 1 1 8 4 1 1 1 8 8 8 1 8 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 IgG 1 1 1 1 6 6 1 1 1 1 4 4 4 8 4 6 8 8 8 8 6 1 8 8 8 1 1 1 1 8 1 8 8 1 1 1 8 8 8 8 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 4 1 1 1 1 1 1 1 17.4% C1q 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 8 1 1 8 8 8 8 1 1 8 8 8 1 1 1 1 8 1 1 8 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 IgG 8 1 1 8 8 8 6 8 8 8 8 6 6 8 8 8 8 8 6 6 6 1 1 1 1 8 1 1 1 4 1 6 1 4 8 8 8 8 8 8 8 1 8 8 8 8 8 8 8 8 8 8 8 8 1 1 8 8 44.5% C1q 1 1 1 1 1 1 1 8 1 4 8 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 8 1 1 1 1 1 1 1 8 8 8 8 8 8 6 8 8 8 8 1 1 6 1 IgG 8 8 8 8 8 6 1 8 8 8 8 6 6 6 8 8 6 6 6 6 6 1 6 6 6 8 1 1 1 6 1 6 6 6 4 1 8 8 8 8 8 8 4 1 1 1 1 1 1 1 4 1 1 1 8 8 4 4 39.1% C1q 1 4 4 4 1 1 1 8 1 8 8 1 1 1 8 8 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 8 8 8 8 4 4 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 8 8 1 1 A Bw4 Bw6 DRB1 DRB345 500~ 2000~ nmfi 1 ~500 4 6 8 5000~ JPN gf>=0.1% 2000 5000 8

比 較 施設間差 HLA Class I & II Sample 試薬 Lot.(Class IIのみ ) 数値データ (Raw Data, nmfi, RXN, NGB ratio, Beads count, Control Beads) 反応領域 (Gray zone/ 弱 強反応領域など ) 9

判ったこと 施設間差がある! 10

Beads 2.5μL Beads count K1 classi/ii K2 I/II K3 I/II K4 I/II; 784 beads 200 100 50 103 1 Beads 5.0μL 200 100 D. General Guidelines Each bead count should be over 50. A lower bead count may be due to sample loss during the wash steps. It could also be due to improper calibration or clogging of the LABScan 100 or LABScan3D flow analyzer, or by photo-bleached beads that dropped out from the mapped region. (LS-LSCN-PI-EN-00, Rev 255) 11

Control Beads 1,500 D. General Guidelines The NC value is usually less than 500 except for serum samples with a high background. It should always be lower than 1500 and less than or equal to half of the PC value. The PC value should be over 500 and at least twice the NC value. (LS-LSCN-PI-EN-00, Rev 255) 12

抗体陽性率 : 施設別 抗体陽性率の違いは特異性判定の微妙な相違に直結する 13

Beads 2.5μL vs 5.0μL 相関 : 施設別

Beads 2.5μL vs 5.0μL 相関 : サンプル別 15

判ったこと施設間差がある! 半量では測定値分布が陽性方向にシフトする! 弱陽性領域では測定値分布の変化率が逆転している! 16

測定値分布の変化率 変化率各クラスター (nmfi=500 1,000 など ) 内の測定値分布がビーズ 5μL と 2.5µL でどのように変化したかを表す N=8,848(K1~K4 Class I & II 11 施設 ) Gray zone スコア (Rxn) は 前後のシグナル強度の関係とエピ トープ情報からソフトウェアが自動的に判定する 17

測定値分布の詳細 Beads HLA Bw4/6 Molecular ID Specificity DQA/DPA Specificity nmfi Rxn Beads Beads Beads Beads 5.0μL 2.5μL 5.0μL 2.5μL 65 B51 Bw4 B*51:02 4,270 5,379 8 8 25 A36 A*36:01 4,483 5,576 8 8 71 B57 Bw4 B*57:01 4,659 5,750 8 8 59 B49 Bw4 B*49:01 4,199 5,161 6 8 51 B39 Bw6 B*39:01 4,958 5,877 8 8 50 B38 Bw4 B*38:01 4,716 5,633 8 8 72 B57 Bw4 B*57:03 4,664 5,544 8 8 73 B58 Bw4 B*58:01 4,190 5,023 6 8 40 B75 Bw6 B*15:02 4,337 5,097 8 8 8 A11 A*11:01 4,485 5,134 8 8 36 B13 Bw4 B*13:02 4,665 5,299 8 8 96 B13 Bw4 B*13:01 1,858 2,304 6 6 12 A24 A*24:03 1,871 2,285 6 6 96 DP28 DPA1*04:01 DPB1*28:01 1,769 2,169 6 6 64 DQ9 DQA1*02:01 DQB1*03:03 1,992 2,138 6 6 35 B8 Bw6 B*08:01 959 1,084 4 4 38 DR51 DRB5*02:02 958 1,047 6 4 測定値分布の逆転は 各クラスター (nmfi=500 1,000 など ) の設定が原因! 2000~5000 5000~ 1000~2000 2000~5000 500~1000 1000~2000 90 DP18 DPA1*01:05 DPB1*18:01 378 526 4 4 49 DQ5 DQA1*01:02 DQB1*05:02 474 510 4 4 K4 P09 0~500 500~1000 18

判ったこと施設間差がある! 半量では測定値分布が陽性方向にシフトする! 弱陽性領域では測定値分布の変化率が逆転している! %PRAが高いサンプルは測定値分布の変化率が大きい! 19

測定値分布の変化率 : サンプル別 変化率各クラスター (nmfi=500 1,000 など ) 内の測定値分布がビーズ 5μL と 2.5µL でどのように変化したかを表す N=8,848(K1~K4 Class I & II 11 施設 ) Gray zone %PRA nmfi>=5,000 K1 28.6% K2 17.4% K3 44.5% K4 39.1% スコア (Rxn) は 前後のシグナル強度の関係とエピ トープ情報からソフトウェアが自動的に判定する 20

Beads 2.5μL vs 5.0μL 抗体陽性率 : サンプル別 21

判ったこと施設間差がある! 半量では測定値分布が陽性方向にシフトする! 弱陽性領域では測定値分布の変化率が逆転している! %PRAが高いサンプルは測定値分布の変化率が大きい! 測定値分布の変化は特異性判定に影響する可能性がある! 22

測定値分布の変化率 : 施設別 Gray zone Gray zone Gray zone 23

測定値分布の詳細 Beads HLA Bw4/6 Molecular ID Specificity DQA/DPA Specificity nmfi Rxn Beads Beads Beads Beads 5.0μL 2.5μL 5.0μL 2.5μL 65 B51 Bw4 B*51:02 4,270 5,379 8 8 25 A36 A*36:01 4,483 5,576 8 8 71 B57 Bw4 B*57:01 4,659 5,750 8 8 59 B49 Bw4 B*49:01 4,199 5,161 6 8 51 B39 Bw6 B*39:01 4,958 5,877 8 8 50 B38 Bw4 B*38:01 4,716 5,633 8 8 72 B57 Bw4 B*57:03 4,664 5,544 8 8 73 B58 Bw4 B*58:01 4,190 5,023 6 8 40 B75 Bw6 B*15:02 4,337 5,097 8 8 8 A11 A*11:01 4,485 5,134 8 8 36 B13 Bw4 B*13:02 4,665 5,299 8 8 96 B13 Bw4 B*13:01 1,858 2,304 6 6 12 A24 A*24:03 1,871 2,285 6 6 96 DP28 DPA1*04:01 DPB1*28:01 1,769 2,169 6 6 64 DQ9 DQA1*02:01 DQB1*03:03 1,992 2,138 6 6 35 B8 Bw6 B*08:01 959 1,084 4 4 38 DR51 DRB5*02:02 958 1,047 6 4 測定値分布の変化は 特異性判定に影響する可能性がある! 2000~5000 5000~ 1000~2000 2000~5000 500~1000 1000~2000 90 DP18 DPA1*01:05 DPB1*18:01 378 526 4 4 49 DQ5 DQA1*01:02 DQB1*05:02 474 510 4 4 K4 P09 0~500 500~1000 24

判ったこと施設間差がある! 半量では測定値分布が陽性方向にシフトする! 弱陽性領域では測定値分布の変化率が逆転している! %PRAが高いサンプルは測定値分布の変化率が大きい! 測定値分布の変化は特異性判定に影響する可能性がある! バックグランドの処理でデータが改善される! 25

非特異反応吸着処理で改善 Gray zone 26

気になったこと施設間差がある! 半量では測定値分布が陽性方向にシフトする! 弱陽性領域では測定値分布の変化率が逆転している! %PRAが高いサンプルは測定値分布の変化率が大きい! 測定値分布の変化は特異性判定に影響する可能性がある! バックグランドの処理でデータが改善される! 操作の正確性を欠くと半量法での試薬性能を低下させる! 27

気になったこと 追加試験 Beads Serum Dil. 5.0µL 20µL x1.25 2.5µL 20µL x1.125 2.5µL 10µL x1.25 血清濃度が若干高い状態のため陽性傾向となっていたか? 血清濃度を揃えたら陰性傾向になった! 28

結 語 施設間差がある! 半量では測定値分布が陽性方向にシフトする! 弱陽性領域では測定値分布の変化率が逆転している! %PRAが高いサンプルは測定値分布の変化率が大きい! 測定値分布の変化は特異性判定に影響する可能性がある! バックグランドの処理でデータが改善される! 操作の正確性を欠くと半量法での試薬性能を低下させる! 適正な血清量は更に検討が必要! 29